| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 2,873 |
| تعداد مقالات | 32,555 |
| تعداد مشاهده مقاله | 42,418,905 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 19,194,515 |
بررسی اثر تنظیم‌کننده‌های رشد بر ریزازدیادی گیاه دارویی سنا (Cassia angustifolia Vahl.) | ||
| تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران | ||
| مقاله 9، دوره 28، شماره 1 - شماره پیاپی 55، شهریور 1399، صفحه 79-90 اصل مقاله (918.44 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله علمی - پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijrfpbgr.2020.342212.1362 | ||
| نویسندگان | ||
| فرحناز عزیزی1؛ لیلا سمیعی2؛ محمد مقدم* 3 | ||
| 1دانش‌آموخته کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد | ||
| 2استادیار، گروه گیاهان زینتی، پژوهشکده علوم گیاهی، دانشگاه فردوسی مشهد | ||
| 3دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد | ||
| چکیده | ||
| سنا (Cassia angustifolia Vahl.)، گیاه دارویی مهم از خانواده Ceasalpiniaceae است که در درمان برخی از بیماریها ازجمله عفونت‌های پوستی، درمان یبوست و کرم روده کاربرد دارد. هدف از این پژوهش بهینهسازی ریزازدیادی این گیاه میباشد. به این منظور ابتدا بذرهای سنا ضدعفونی و در محیط کشتMS کشت شدند و از قطعات ساقه دارای گره به‌عنوان ریزنمونه استفاده شد. تیمارهای مورد بررسی برای بهینهسازی محیط کشت پرآوری شامل غلظت‌های مختلف سیتوکینین‌هایBA و Kin (۱،۰، ۲ و ۴ میلیگرم در لیتر) در ترکیب با NAA (۰ و ۲۵/۰ میلیگرم در لیتر) بود. پس از بهدست آوردن بهترین نوع و غلظت سیتوکینین برای پرآوری (سیتوکینین BA)، این تنظیم‌کننده رشد در ترکیب با اکسین‌های مختلف برای بهینهسازی پرآوری ریزنمونه‌ها آزمایش شد. در این آزمون BA در سه سطح (۵/۰، ۱ و ۲ میلیگرم در لیتر) در ترکیب با NAA،IAA وIBA هریک در دو غلظت (۰ و ۲۵/۰ میلیگرم در لیتر) بررسی شدند. سپس شاخساره‌های پرآوری شده (حداقل دارای ۳ سانتی‌متر طول) برای القای ریشهزایی تحت تأثیر دو نوع اکسین NAA وIBA در غلظت‌های مختلف (۰، ۳/۰، ۶/۰ و ۹/۰ میلیگرم در لیتر) قرار گرفتند. نتایج نشان داد که بیشترین تعداد شاخه‌زایی (۹۳/۲ شاخساره در هر ریزنمونه) و تعداد برگ (۶/۲۱ برگ در هر شاخساره) در تیمار ۱ میلیگرم BA همراه با ۲۵/۰ میلیگرم در لیتر NAA حاصل شد. تیمار BA در سطح ۱ میلیگرم در لیتر بههمراه NAA با ۲۵/۰ میلیگرم در لیتر در نهایت به‌عنوان بهترین تیمار در پرآوری ریزنمونه‌ها بود. ییشترین درصد ریشهزایی در تیمار 3/0 میلیگرم در لیتر IBA بدست آمد که تفاوت معنیداری با تیمار 3/0 میلیگرم در لیتر NAA نداشت. همچنین کاربرد IBA با میزان 9/0 میلیگرم در لیتر سبب بیشترین تعداد و طول ریشه گردید، بهطوریکه بهترتیب سبب افزایش 22/172 و 41/73 درصد صفات مذکور نسبت به شاهد گردید. نتایج این پژوهش میتواند در ریزازدیادی و تکثیر وسیع این گیاه استفاده شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| سنا (Cassia angustifolia Vahl)؛ سیتوکینین؛ تنظیم‌کننده رشد؛ پرآوری؛ کشت بافت | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Assessment of the effect of plant growth regulators on micropropagation of Senna (Cassia angustifolia Vahl.) medicinal plant | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Farahnaz Azizi1؛ Leila Samiei2؛ Mohammad Moghaddam3 | ||
| 1- M.Sc graduated., Department of Horticulture Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, I.R. Iran. | ||
| 2Assist. Prof., Department of Ornamental plants, Institute of plant Science, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran. | ||
| 3Assoc. Prof., Department of Horticulture Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, I.R. Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| Senna (Cassia angustifolia Vahl.), known as an important medicinal plant, belongs to the Caesalpiniaceae family used in the treatment of some diseases such as skin infections, constipation, and intestinal worms. The aim of this study was to optimize the micropropagation of this plant. For this purpose, senna seeds were first disinfected and cultured in MS medium and the nodular stem parts were used as explants. The treatments were used to optimize the propagation medium supplemented with different concentrations of cytokinins, BA and Kin (0, 1, 2, and 4 mgL-1) in combination with NAA (0 and 0.25 mgL-1). After finding the best type and concentration of cytokinin for propagation (cytokinin BA), this growth regulator was tested in combination with various auxins to optimize the proliferation of the explants. In this experiment, BA was evaluated at three concentrations (0.5, 1, and 2 mgL-1), in combination with NAA, IAA, and IBA at two concentrations (0 and 0.25 mgL-1). The propagated shoots (at least 3 cm long) were then exposed to two types of auxin NAA and IBA at different concentrations (0, 0.3, 0.6, and 0.9 mgL-1) to induce rooting. The results indicated that 1 mgL-1 BA treatment in combination with 0.25 mgL-1 NAA induced the maximum shoot proliferation (2.93 shoots per explant) and leaf number (21.6 leaves per shoot). Finally, NAA with 0.25 mg / l BA treatment at the concentration of 1 mgL-1 in combination with 0.25 mgL-1 NAA, was selected as the best treatment for the propagation of the explants. Maximum rooting induction obtained in 0.3 mgL-1 IBA treatment which was not significantly different from 0.3 mgL-1 NAA. Moreover, application of IBA at the concentration of 0.9 mgL-1 caused the higher mean values of root number and root length, so that it increased by 172.22 and 73.41% of the mentioned traits compared to the control, respectively. The results of this study can be used in micropropagation and extensive proliferation of this plant. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Senna (Cassia angustifolia Vahl.), Cytokinin, Growth regulator, Propagation, Tissue culture | ||
| مراجع | ||
|
Afzalifar, M., 2012. Evaluation of different propagation and androgenesis in Satureja khuzistanica and S. rechingeri (Doctoral dissertation, Medicinal Plants and Drug Research Institute. Shahid Beheshti University, Iran. (In Persian). - Agrawal, V. and Sardar, P.R., 2003. In vitro organogenesis and histo-morphological investigations in senna (Cassia angustifolia)-a medicinally valuable shrub. Physiology and Molecular Biology of Plants, 9: 131-140. - Agrawal, V. and Sardar, P.R., 2006. In vitro propagation of Cassia angustifolia through leaflet and cotyledon derived calli. Biologia Plantarum, 50(1): 118-122. - Agrawal, V. and Sardar, P.R., 2007. In vitro regeneration through somatic embryogenesis and organogenesis using cotyledons of Cassia angustifolia Vahl. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 43(6): 585-592. - AKCcedil, E., OLUK, A. and Ihsan, Y.A.Ş.A., 2013. Comparison of the antimicrobial activity and essential oil content of wild and micropropagated Origanum sipyleum L.: A medicinal herb native to Turkey. Journal of Medicinal Plants Research, 7(6): 230-233. - Anis, M., Husain, M.K. and Shahzad, A., 2005. In vitro plantlet regeneration of Pterocarpus marsupium Roxb., an endangered leguminous tree. Current Science, 88(6): 861-863.
- Baskaran, P. and Jayabalan, N., 2005. An efficient micropropagation system for Eclipta, alba A valuable medicinal herb. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 41(4): 532-539. - Dhandapani, M., Kim, D.H. and Hong, S.B., 2008. Efficient plant regeneration via somatic embryogenesis and organogenesis from the explants of Catharanthus roseus. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 44(1): 18-25. - Farsi, M. and Zolala, J., 2011. Introduction to plant biotechnology (5th Edition). Ferdowsi University of Mashhad Publication. Mashad, Iran. (In Persian). - Ghadiri Sardrood, S., Saadatmand, S., Assareh, M. and Nejadsattari, T., 2019. Micropropagation of medicinal herb- Centella asiatica (L.). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 32(1): 198-212. (In Persian). - Guo, D.P., Zhu, Z.J., Hu, X.X. and Zheng, S.J., 2005. Effect of cytokinins on shoot regeneration from cotyledon and leaf segment of stem mustard (Brassica juncea var. tsatsai). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 83(1): 123-127. - Husain, M.K., Anis, M. and Shahzad, A., 2008. In vitro propagation of a multipurpose leguminous tree (Pterocarpus marsupium Roxb.) using nodal explants. Acta Physiologiae Plantarum, 30(3): 353-359. - Junaid, A., Mujib, A., Bhat, M.A., Sharma, M.P. and Šamaj, J., 2007. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Catharanthus roseus. Biologia Plantarum, 51(4): 641-646. - Kapur, B.M. and Atal, C.K., 1977. Cultivation and utilization of senna in India. Cultivation & Utilization of Medicinal and Aromatic Plants. Pp.191-202. - Karuppusamy, S., Kiranmai, C., Aruna, V. and Pullaiah, T., 2006. Micro-propagation of Vanasushava pedata-An endangered medicinal plant of South India. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 16(2): 85-94. - Khezri, S.H., 2002. A dictionary of medicinal plants. Rostamkhani Press. Tehran. Iran. 320 p. - Martin, G., Geetha, S.P., Raja, S.S., Raghu, A.V., Balachandran, I. and Ravindran, P.N., 2006. An efficient micropropagation system for Celastrus paniculatus Willd.: a vulnerable medicinal plant. Journal of Forest Research, 11(6): 461-465. - Momeni, A., Zaker Tavallaie, F., Shokoohifar, F. and Kheirkhah, M., 2019. Optimization of regeneration in mountain Ziziphora (Ziziphora clinopodioides Lam). Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 27(1): 143-151. (In Persian). - Naidu, T.B., Rao, S.N., Mani, N.S., Mohan, J. and Pola, S., 2010. Conservation of an endangered medicinal plant Centella asiatica through plant tissue culture. Drug Invention Today, 2(1): 17-21 - Narimani, R., Moghaddam, M. and Mojarab, S., 2017. Micropropagation evaluation of the endangered medicinal plant (Nepeta nuda L.). Journal of Cell and Tissue, 7(4): 387-397 (In Persian). - Parveen, S. and Shahzad, A., 2011. A micropropagation protocol for Cassia angustifolia Vahl. from root explants. Acta Physiologiae Plantarum, 33(3): 789-796. - Pati, P.K., Sharma, M. and Ahuja, P.S., 2000, May. Micropropagation, protoplast culture and its implications in the improvement of scented rose. In III International Symposium on Rose Research and Cultivation 547, pp. 147-158. - Shafie Haji Abad, M., Hamid Oghli, Y. and Fatahi Moghadam, J., 2008. The effects of different nutrient media on shoot proliferation of Boston fern (Nephrolepis Exaltata Schott Cv. ‘Bostoniensis’). Horticulture Science Technology, 9: 139-144. (In Persian). - Shahzad, A., Parveen, S. and Fatema, M., 2011. Development of a regeneration system via nodal segment culture in Veronica anagallis-aquatica L.–an amphibious medicinal plant. Journal of Plant Interactions, 6(1): 61-68. - Sharma, R.K., Wakhlu, A.K. and Boleria, M., 2004. Micropropagation of Anethum graveolens L through axillary shoot proliferation. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 13(2): 157-159. - Siddique, I. and Anis, M., 2007. In vitro shoot multiplication and plantlet regeneration from nodal explants of Cassia angustifolia (Vahl.): a medicinal plant. Acta Physiologiae Plantarum, 29(3): 233-238. - Steephen, M., Nagarajan, S., Ganesh, D., 2010. Phloroglucinol and silver nitrate enhances axillary shoot proliferation in nodal explants of Vitex negundo L. â an aromatic medicinal plant. Iranian Journal of Biology, 8(2): 82-89 (In Persian). - Sultanpour, M., Mahna, N. and Farsadakhtar, N., 2018. Effect of different concentrations of growth regulators on callus formation and regeneration of Hypericum perforatum. Agricural Biotechnology, 4(10): 75-92 (In Persian). - Trease, G.E. and Evans, W.C., 1983. Textbook of Pharmacognosy. Balliere. Tindall, London, pp.57-59. - Upadhyay, A., Nayak, P.S. and Khan, N.A., 2011. Sennoside contents in Senna (Cassia angustifolia Vahl.) as influenced by date of leaf picking, packaging material and storage period. Journal of Stored Products and Postharvest Research, 2(5): 97-103. - Zhang, K.M., Yu, H.J., Shi, K., Zhou, Y.H., Yu, J.Q. and Xia, X.J., 2010. Photoprotective roles of anthocyanins in Begonia semperflorens. Plant Science, 179(3): 202-208. -Mahmoodzadeh, H., Abasi, F. and Rohani, Sh., 2010. The effect of different concentrations of cytokinins on micropropagation of Zinnia elegans Thumbelina. Journal of Animal Physiology and Development (Quality Journal of Biology Sciences), 2: 61-65. - Vidoz, M.L., 2006. Tissue Culture of Trifolium polymorphum, T. carolinianum, Adesmia latifolia, A. bicolor and Lotononis bainesii (Doctoral dissertation, University of Florida). | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 331 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 330 |
||