| تعداد نشریات | 285 |
| تعداد نشریات سازمان | 83 |
| تعداد شماره‌ها | 3,084 |
| تعداد مقالات | 34,421 |
| تعداد مشاهده مقاله | 48,724,052 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 79,257,040 |
اثر نوع ریزنمونه، محیط کشت و تنظیم‌کننده‌‌های رشد‌گیاهی بر کالوس‌زایی و باززایی غیرمستقیم نخودشیرین (Lathyrus odoratus L.) | ||
| تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران | ||
| مقاله 9، دوره 27، شماره 1 - شماره پیاپی 53، شهریور 1398، صفحه 98-107 اصل مقاله (906.98 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله علمی - پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijrfpbgr.2019.120262 | ||
| نویسندگان | ||
| مهدی بذرافکن1؛ محمدحسین دانشور2؛ محمدرضا صالحی سلمی* 3 | ||
| 1دانش‌آموخته کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران | ||
| 2استاد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران | ||
| 3استادیار گروه علوم باغبانی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان | ||
| چکیده | ||
| DOR: 98.1000/1735-0891.1398.27.116.53.1.1575.41 نخود شیرین (Lathyrusodoratus L.) متعلق به خانواده بقولات و یک گیاه زینتی علفی و رونده با گل های معطر است. این گیاه به‌عنوان یک منبع ژنتیکی برای صفات مهم مثل مقاومت در برابر تنشها ازجمله تنش گرمایی محسوب می‌شود. همچنین به منظور حفظ ساختار ژنتیکی آن، تکثیر این گیاه از طریق کشت بافت می‌تواند مؤثر باشد. به منظور یافتن پروتکل کارآمد شاخه زایی از کالوس؛ اثر نوع ریزنمونه، محیط کشت و تنظیم کننده های رشد گیاهی بر کالوس زایی و شاخه زایی نخود شیرین بررسی شد. نتایج نشان داد که ریزنمونه میانگره نسبت به ریشه کالوس بیشتری تولید کرد (77/0 گرم کالوس برای هر ریزنمونه) و محیط کشت MS نسبت به محیط کشت B5 تأثیر بیشتری در کالوس زایی داشت (78/0 گرم کالوس برای هر ریزنمونه). درمجموع بیشترین کالوس زایی (9/1 گرم کالوس برای هر ریزنمونه) هنگامی که ریزنمونه های میانگره در محیط کشت MS همراه با 5/0 میلیگرم 6- بنزیل آمینو پورین (BAP) و 2 میلیگرم در لیتر 1- نفتالین استیک اسید (NAA) کشت شد، به دست آمد. بیشترین باززایی شاخه (33/5 عدد شاخه برای هر ریزنمونه) از کالوس های کشت‌شده در محیط کشت MS همراه با 1/0 میلی گرم در لیتر تیدیازورون (TDZ) به دست آمد. این پروتکل می تواند پایه و اساس تحقیقات آینده در ارتباط با بهبود ژنتیکی و تولید انبوه نخود شیرین در کشور باشد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| تولید انبوه؛ تیدیازورون؛ درون شیشه‌ای؛ میانگره؛ نفتالین استیک اسید | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of explant type, culture media and growth regulators on callus induction and plant regeneration of sweet pea (Lathyrus odoratus L.) | ||
| نویسندگان [English] | ||
| M. Bazr-Afkan1؛ M. Hosein Daneshvar2؛ Mohamadreza Salehi Salmi3 | ||
| 1M.Sc., Department of Horticulture Science, Khuzestan Agricultural Sciences and Natural Resources University, Ahvaz, I.R. Iran | ||
| 2Prof., Department of Horticulture Science, Khuzestan Agricultural Sciences and Natural Resources University, Ahvaz, I.R. Iran. | ||
| 3Department of Horticultural Science, Agricultural Sciencies and Natural Resources University of Khuzestan, Khuzestan, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| DOR: 98.1000/1735-0891.1398.27.116.53.1.1575.41 Sweet pea (Lathyrus odoratus L.), belongs to Fabaceae family, is an ornamental herbaceous plant with fragrant flowers and climber. This plant is as a source of genetic for important traits such as resistance to edaphic stresses. In order to keep genetic sources, plant propagation through tissue culture can be effective. To establish an efficient protocol of shoot regeneration from callus, effects of explant type, culture media and plant growth regulators on callus induction and shoot regeneration of sweet pea were evaluated. The results showed that internode was the best explant for callus induction (0.77 g callus per each explant) and MS was the best medium to induce callus formation with 0.78 g callus per each explant. The highest callus induction (1.9 g callus per each explant) was achieved planting internode on MS medium supplemented with 0.5 mg.l-1 6-benzylaminopurine (BAP) and 2.0 mg.l-1 1-Naphthaleneacetic acid (NAA) after 25 days of culture. Shoots regenerated at the highest frequency with 5.33 shoots when calli were cultured on MS medium with 1.0 mg.l-1 Thidiazuron (TDZ). This protocol provides a basis for future studies on genetic improvement and could be applied to large-scale multiplication systems for commercial nurseries of Lathyrus odoratus L. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| In vitro, Internode, Mass production, Naphthaleneacetic acid, Thidiazuron | ||
| مراجع | ||
|
- Bainade, P.S., Patil, S.R., Deshmukh, S.G. and Sawant, P.V., 2014. In vitro Regeneration of Lathyrus (Lathyrus sativus L.) as influenced by mutagen treatment. Journal of Cell and Tissue Research, 14: 4113-4116. - Fascella, G. and Zizzo, G.V., 2005. Effect of growing media on yield and quality of soilless cultivated rose. Acta Horticulturae, 697: 133-138. - Gamborg, O., Miller, R. and Ojima, K., 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research, 50: 151-158. - George, E.F., Hall, M.A. and Klerk, G.D., 2007. Plant propagation by tissue culture (Vol 1). Springer, 508 p. - Koetle, M.J., Finnie, J.F. and van Staden, J. 2010. In vitro propagation in Dierama erectum Hilliard. Plant cell tissue organ culture, 103: 23-31. - Magyar-Tabori, K., Dobranszki, J., Teixeira da Silva, J.A., Bulley, S.M. and Hudak, I., 2010. The role of cytokinins in shoot organogenesis in apple. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 101: 251- 267. - Memon, N., 2012. In vitro propagation of Gladiolus plantlets and cormlets. Journal of Horticultural Science and ornamental plants, 4: 280-291. - Mera, M., Montenegro, A., Espinoza, A. and Guete, N., 2000. Research backs grass pea exports by small Chilean farmers. Lathyrus Lathyrism Newsletter, 1: 31-36. - Murashige, T. and Skoog, F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tissue culture. Physiologia Plantarum, 15: 473-476. - Naik P.M., Godbole, M., Nagella, P. and Murthy, H.N., 2018. Influence of different media, medium strength and carbon sources on adventitious shoot cultures and production of bacoside A in Bacopa monnieri (L.). Ceylon Journal of Science, 46: 97-104. - Nissen, S.J and Sutter, E.G., 1990. Stability of IAA and IBA in nutrient medium of several tissue culture procedures. Horticultural Science, 25: 800-802. - Ochatt, S.J., Abirached-Darmency, M., Marget, P. and Aubert, G., 2007. The Lathyrus paradox: “poor men’s diet” or a remarkable genetic resource for protein legume breeding: 41-60. In: Ochatt, S.J. and Mohan, J. S. (Eds.) Underutilised and neglected crops, herbs and spices. Science press, Enfield, CT, 192 p. - Ochatt, S.J., Conreux, C. and Jaca, L., 2010. In vitro production of sweet peas (Lathyrus odoratus L.) via axillary shoots: 293-302. In: Jain, S.M. and Ochatt, S.J. (Eds.). Protocols for In Vitro Propagation of Ornamental Plants. Springer protocols. Humana Press. 655 pp. - Parsons, R., 2000. Early History of the Sweet Pea. 5-19. In: Ball, C. (Ed). National Sweet Pea Society Centenary Celebration. National Sweet Pea Society. Stockbridge, UK, 176 p. - Piwowarczyk, B. and Pindel, A., 2014. Early stages of somatic embryogenesis in root callus of grass pea (Lathyrus sativus L.). Journal of Central European Agriculture, 15: 209-218. - Razdan, M.K., Cocking, E.C. and Power, J.B. 1980. Callus regeneration from mesophyll protoplasts of sweet pea (Lathyrus odoratus L.). Zeitschrift für flanzenphysiologie, 96: 181-183. - Roy, P.K., Ali, K., Gupta, A., Barat, G.K. and Mehta, S.L., 1993. β-N-Oxalyl-L-α, β-diaminopropionic acid in somaclones derived from internode explants of Lathyrus sativus. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 2: 9-13. - Roy, P.K., Barat, G.K. and Mehta, S.L. 1992. In vitro plant regeneration from callus derived from root explants of Lathyrus sativus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 29: 135-138. - Sinha, R.R., Das, K. and Sen, S.K., 1982. Plant regeneration from stem-derived callus of the seed legume Lathyrus sativus L. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 2: 67-76. - Stefaniak, B., 1994. Somatic embryogenesis and plant regeneration of Gladiolus (Gladiolus Hort.). Plant cell Reports, 13: 386-389. - Yan, M., Xu, Ch., Kim, Ch., Um, Y., Bah, A.A. and Guo, D., 2009. Effects of explant type, culture media and growth regulators on callus induction and plant regeneration of Chinese jiaotou (Allium chinense). Scientia Horticulturae, 123: 124-128. - Zambrea, M., Chowdhuryb, B., Kuob, Y., Montagua, M.V., Angenond, G. and Lambein, F., 2002. Prolific regeneration of fertile plants from green nodular callus induced from meristematic tissues in Lathyrus sativus L. (grass pea). Plant Science, 163: 1107-1112. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 610 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 420 |
||