اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات283
تعداد نشریات سازمان81
تعداد شماره‌ها2,729
تعداد مقالات31,081
تعداد مشاهده مقاله29,048,235
تعداد دریافت فایل اصل مقاله16,339,062
Maghami, Masoumeh, lotfi, Mohsen, Sotoodehnejadnematalahi, Fattah, Mohammadi, Ashraf. (1402). Characterization of Razi Bovine Kidney (RBK) Cell Line as a Sensitive Cell to Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1). سامانه مدیریت نشریات علمی, 78(5), 1528-1541. doi: 10.32592/ARI.2023.78.5.1528
Masoumeh Maghami; Mohsen lotfi; Fattah Sotoodehnejadnematalahi; Ashraf Mohammadi. "Characterization of Razi Bovine Kidney (RBK) Cell Line as a Sensitive Cell to Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1)". سامانه مدیریت نشریات علمی, 78, 5, 1402, 1528-1541. doi: 10.32592/ARI.2023.78.5.1528
Maghami, Masoumeh, lotfi, Mohsen, Sotoodehnejadnematalahi, Fattah, Mohammadi, Ashraf. (1402). 'Characterization of Razi Bovine Kidney (RBK) Cell Line as a Sensitive Cell to Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1)', سامانه مدیریت نشریات علمی, 78(5), pp. 1528-1541. doi: 10.32592/ARI.2023.78.5.1528
Maghami, Masoumeh, lotfi, Mohsen, Sotoodehnejadnematalahi, Fattah, Mohammadi, Ashraf. Characterization of Razi Bovine Kidney (RBK) Cell Line as a Sensitive Cell to Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1). سامانه مدیریت نشریات علمی, 1402; 78(5): 1528-1541. doi: 10.32592/ARI.2023.78.5.1528

Characterization of Razi Bovine Kidney (RBK) Cell Line as a Sensitive Cell to Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1)

Archives of Razi Institute
مقاله 14، دوره 78، شماره 5، آذر و دی 2023، صفحه 1528-1541    اصل مقاله (1.58 M)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.32592/ARI.2023.78.5.1528
نویسندگان
Masoumeh Maghami1؛ Mohsen lotfi* 2؛ Fattah Sotoodehnejadnematalahi1؛ Ashraf Mohammadi3
1Department of Biology, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
2Department of Quality Control, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education, and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran.
3Department of Human Viral Vaccines, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
چکیده
Viruses are obligate parasites and are completely dependent on host cells for survival and replication. RBK cell line developed and introduced by Razi Vaccine and Serum Research Institute, has been successfully established as a continuous cell line over successive passages.Viruses are obligate parasites that completely rely on host cells for survival and replication. Razi Bovine Kidney (RBK) cell line was introduced and developed by the Razi Vaccine and Serum Research Institute. It has been successfully established as a continuous cell line over successive passages. As demonstrated in this experimental study, the RBK cells have shown suitable sensitivity to certain viruses, including Bovine Herpesvirus-1 (BoHV-1) virus. In the present research, the RBK cell line characteristics were analyzed using molecular and karyotype methods and growth specifications. Cloning of the RBK cell line was performed using the limited dilution method, and each cell clone was quantitatively and qualitatively characterized. Four cell clones were compared based on their sensitivity to the BoHV-1 virus. Then, the RBK-D5 clone was selected as the most appropriate cell line for further studies. The RBK-D5 was subjected to tests for identity, chromosomal analysis, and doubling time. In the end, the origin of this cell line was confirmed by the PCR method. It was observed that the cell line exhibited karyotype diversity due to aneuploidy, which can be responsible for the procreation of chromosomal instability. This diversity represents chromosomal changes in the continuous cell line that carries the characteristic of an immortalized cell line. The RBK-D5 was found to be more sensitive to the BOHV-1 virus. Surprisingly, its titer was evaluated at 108.5 CCID50/ml. The obtained results suggested that the RBK cell line is suitable for the BoHV-1 virus and can be useful for virus detection, propagation, and quality control or viral titration.
کلیدواژه‌ها
BoHV-1 virus؛ Karyotyping؛ RBK cell line؛ RBK-D5
عنوان مقاله [English]
تعیین ویژگی های رده سلولی RBK به عنوان یک سلول حساس به ویروس هرپس گاوی تیپ یک (BoHV-1)
چکیده [English]
ویروس ها انگل های اجباری هستند که برای بقا و تکثیر کاملاً به سلول های میزبان متکی هستند. رده سلولی RBK که توسط موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی تهیه و معرفی شده است، با موفقیت به عنوان یک رده سلولی پیوسته متعاقب پاساژ های متوالی ایجاد شده است. مطالعات تجربی نشان داده است، سلول‌های RBK حساسیت مناسبی نسبت به ویروس‌های خاص، از جمله ویروس BoHV-1 نشان می دهند.
در تحقیق حاضر، ویژگی‌های رده سلولی RBK با استفاده از روش‌های مولکولی و کاریوتیپ و همچنین شاخصه های رشد مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. شبیه سازی رده سلولی RBK با استفاده از روش رقت گیری محدود انجام شد و هر کلون سلولی از نظر کمی و کیفی ارزیابی گردید. چهار کلون سلولی بر اساس حساسیت آنها به ویروس BoHV-1 مقایسه شد. سپس کلون RBK-D5 به عنوان مناسب ترین رده سلولی برای مطالعه بیشتر انتخاب شد. RBK-D5 تحت آزمایش های هویت، تجزیه و تحلیل کروموزومی و زمان دو برابر شدن قرار گرفت. در نهایت منشاء این رده سلولی با روش PCR تایید شد. مشاهده شد که رده سلولی مذکور به دلیل آنئوپلوئیدی، تنوع کاریوتیپ را نشان می‌دهد که می‌تواند مسئول تولید بی‌ثباتی کروموزومی باشد. این تنوع نشان دهنده تغییرات کروموزومی در رده سلولی پیوسته است که ویژگی یک رده سلولی نامیراست. RBK-D5 به ویروس BOHV-1 حساس تر است. با کمال تعجب، تیتر آن CCID50/ml 108.5 ارزیابی شد. این نتایج نشان می دهد که رده سلولی RBK برای ویروس BoHV-1 مناسب است و می تواند برای تشخیص، تکثیر و یا تیتراسیون ویروس مفید باشد.
کلیدواژه‌ها [English]
سلول لاین RBK, ویروسBoHV-1, کاریوتایپینگ, RBK-D5
سایر فایل های مرتبط با مقاله
مراجع
References
1.Anitha T S, Shreyas S Kuduvalli, Oviya Iyappan Ramalakshmi,
Daisy Precilla S. Evaluation of Cell Doubling Time in C6 and
Y79 Cell Lines Based on Seeding Density. SBV Journal of Basic,
Clinical and Applied Health Science.2019;2(4):146-149.
2.Carter M, Essner R, Goldstein N, Iyer M.Guide to Research
Techniques in Neuroscience , Chapter 13 - Cell Culture
Techniques. 2022;Third Edition(978-0-12-818646-6):291-308.
3.Chen B, Zheng Z, Yang J, Chi H, Huang H, Gong H.
Development and characterization of a new cell line derived from
European eel Anguilla anguilla kidney. Biol Open.
2019;8(1):bio037507.
4.Chen X, Qian W, Song Z, Li QX, Guo S. Authentication,
characterization and contamination detection of cell lines,
xenografts and organoids by barcode deep NGS sequencing.
NAR Genom Bioinform. 2020;2(3):lqaa060.
5.Cooper JK, Sykes G, King S, Cottrill K, Ivanova NV, Hanner R,
Ikonomi P. Species identification in cell culture: a two-pronged
molecular approach. In Vitro Cell Dev Biol Anim.
2007;43(10):344-51.
6.Cossart P, Helenius A. Endocytosis of viruses and bacteria. Cold
Spring Harb Perspect Biol. 2014;6(8):a016972.
7.Cribiu EP, Di Berardino D, Di Meo GP, Eggen A, Gallagher DS,
Gustavsson I, et al. International System for Chromosome
Nomenclature of Domestic Bovids (ISCNDB 2000). Cytogenet
Cell Genet. 2001;92(3-4):283-99. doi: 10.1159/000056917.
PMID: 11435702.
8.Freshney, R. I. CULTURE OF ANIMAL CELLS. A MANUAL
OF BASIC TECHNIQUE AND SPECIALIZED
APPLICATIONS. 2016;Seventh Edition.
9.Holečková B, Schwarzbacherová V, Galdíková M, Koleničová S,
Halušková J, Staničová J, et al. Chromosomal Aberrations in
Cattle. Genes (Basel). 2021;12(9):1330.
10. Kerr KC, Stoeckle MY, Dove CJ, Weigt LA, Francis
CM, Hebert PD. Comprehensive DNA barcode coverage of
North American birds. Mol Ecol Notes. 2007;7(4):535-543.
11. Kuduvalli SS, Ramalakshmi O, Daisy Precilla S, Anitha
TS. Evaluation of Cell Doubling Time in C6 and Y79 Cell Lines
Based on Seeding Density. J Basic Clin Appl Health Sci.
2019;2(4):146–149.
12. Langdon, S.P. Cell culture contamination: an overview.
Methods Mol Med. 2004;88:309–17.
13. Lednicky J A. Wyatt D E. The Art of Animal Cell
Culture for Virus Isolation. Biomedical Tissue Culture. InTech.
2012;9:151-178.
14. Leland DS, Ginocchio CC. Role of cell culture for virus
detection in the age of technology. Clin Microbiol Rev.
2007;20(1):49-78.
15. Lindström HJG, Friedman R. Inferring time-dependent
population growth rates in cell cultures undergoing adaptation.
BMC Bioinformatics. 2020;21(1):583.
16. Lincoln, CK, Gabridge MG. Cell culture contamination:
sources, consequences, prevention, and elimination. Methods Cell
Biol. 1998;57:49–65.
17. Pan YS, Wei HJ, Chang CC, Lin CH, Wei TS, Wu SC,
Chang DK. Construction and characterization of insect cellderived influenza VLP: cell binding, fusion, and EGFP
incorporation. J Biomed Biotechnol. 2010;2010:506363.
18. Pastenkos G, Lee B, Pritchard SM, Nicola AV. Bovine
Herpesvirus 1 Entry by a Low-pH Endosomal Pathway. J Virol.
2018;92(20):e00839-18.
19. Potapova TA, Zhu J, Li R. Aneuploidy and chromosomal
Maghami et al / Archives of Razi Institute, Vol. 78, No. 5 (2023) 1528-1541 1541
instability: a vicious cycle driving cellular evolution and cancer
genome chaos. Cancer Metastasis Rev. 2013;32(3-4):377-89.
20. Pye D. Cell lines for growth of sheep viruses. Aust Vet J.
1989;66(7):231-2.
21. Sheltzer JM, Torres EM, Dunham MJ, Amon A.
Transcriptional consequences of aneuploidy. Proc Natl Acad Sci
U S A. 2012;109(31):12644-9.
22. Sobhani M, Lotfi M, Seyfi Abad Shapouri M.R. Ghiami
Rad M. Evaluation of MDBK, BT, CEF and Vero cell lines
sensitivity for replication of bovine parainfluenza virus type
3(bPI3V) in comparison with RBK cell line. Veterinary
Researches & Biological Products. 2018;31(118):48-57.
23. Storch GA. Diagnostic virology. Clin Infect Dis.
2000;31(3):739-51.
24. WHO. TRS987. Recommendations for the evaluation of
animal cell cultures as substrates for the manufacture of biological
medicinal products and for the characterization of cell banks.
2014

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,361
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 266


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب