| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 2,996 |
| تعداد مقالات | 33,553 |
| تعداد مشاهده مقاله | 44,161,104 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 20,534,253 |
تأثیر عصاره نعناع فلفلی، مریم گلی، شیرین بیان و زعفران برسلولهای خونی و فعالیت آنزیم فنل اکسیداز لارو شب‌پره هندی Plodia interpunctella (Lepidoptera: Pyralidae) | ||
| مهار زیستی در گیاه‌پزشکی | ||
| مقاله 10، دوره 10، شماره 1، شهریور 1401، صفحه 169-180 اصل مقاله (562.94 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/bcpp.2023.362728.336 | ||
| نویسندگان | ||
| زهرا ابراهیمی زاده1؛ مریم عجم حسنی* 2 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد حشره شناسی ، گروه گیاه‌پزشکی دانشکده کشاورزی دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران. | ||
| 2استادیار، گروه گیاه‌پزشکی دانشکده کشاورزی دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران. | ||
| چکیده | ||
| همولنف حشرات آخرین سد دفاعی آنها در مقابل عوامل بیگانه مانند ذرات سموم، آلاینده ها، اسپور قارچ ها و باکتری ها و متابولیت های گیاهی است. هموسیت ها به عنوان رکن اصلی دفاع فیزیولوژیک در همولنف گردش می کنند و در مراحل اولیه با تغییر تعداد در برابر تنش، واکنش نشان می دهند. در این تحقیق تأثیر عصاره آبی گیاهان نعناع فلفلی، مریم گلی، شیرین بیان و زعفران بر سامانه ایمنی لارو شب پره هندی Plodia interpunctella (Lepidoptera ;Pyralidae) بررسی شد. لاروهای سن چهارم این آفت انباری، با عصاره های آبی نعناع فلفلی، مریم گلی، شیرین بیان و زعفران در غلظت های 10،6و20 درصد تیمار شدند و تراکم سلول های خونی و فعالیت فنل اکسیداز در دو بازه زمانی 24و 48 ساعت اندازه‌گیری و ثبت شد. نتایج نشان داد تأثیر عصاره‌های مختلف گیاهان نعناع فلفلی، مریم‌گلی، شیرین‌بیان و زعفران بر تعداد کل سلول‌ها، پلاسموتوسیت‌ها وگرانولوسیت‌ها نسبت به شاهد معنی‌دار بود و با افزایش غلظت عصاره‌ها در همه تیمارها و در هر دو زمان آزمایش افزایش یافت. تعداد کل سلول‌ها و گرانولوسیت‌ها در تیمار مریم گلی با غلظت6 درصد پس از 48 ساعت و نعناع فلفلی با غلظت‌ها ی 10 و 20 درصد در هر دو زمان بیشترین افزایش را در تعداد کل سلول‌های خونی نسبت به شاهد داشتند. پلاسموتوسیت‌ها نیز تحت اثر تیمار نعناع فلفلی با غلظت‌های 10 درصد و 20 درصد پس از 24 ساعت و غلظت20 درصد پس از 48 ساعت بیشترین افزایش را نسبت به شاهد داشتند. با توجه به ارزیابی‌های صورت گرفته غلظت 20% مریم‌گلی بیشترین افزایش فعالیت آنزیم فنل اکسیداز را نسبت به شاهد و سایر تیمارها نشان داد. بر اساس نتایج، حضور مقادیر اندک از عصاره‌های گیاهی به‌کارگرفته شده در این تحقیق، به ویژه مریم گلی و نعناع فلفلی در همولنف لاروهای شب پره هندی می‌تواند تاثیر معنی‌داری بر تغییرات تراکم سلول‌های خونی داشته باشد که بالتبع، واکنش ایمنی حشره را در مقابل عامل بیگانه تحریک می‌کند و می‌توان از این یافته در مطالعات ایمنی شناسی این حشره مهم انباری استفاده نمود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| شب‌پره هندی؛ عصاره آبی گیاهان؛ ایمنی؛ آنزیم فنل اکسیداز | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effect of extract of of Mentha piperita, Salvia officinalis, Glycyrrhiza glabra and Crocus sativus on hemocytes and phenoloxidase avtivity in larvae of Plodia interpuncetlla (Lepidoptera: Pyralidae) | ||
| نویسندگان [English] | ||
| zahra ebrahimizadeh1؛ Maryam Ajamhassani2 | ||
| 1MSc Entomology Student, , Department of Plant Protection, Faculty Agricalture, Shahrood University of Technology, Shahrood, Iran. | ||
| 2Assistant Professor, Department of Plant Protection, Faculty Agricalture, Shahrood University of Technology, Shahrood, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| Hemolymph of insects is their last defense barrier against foreign factors such as poison particles, pollutants, fungal and bacterial spores and plant metabolites. As the main pillar of physiological defense, hemocytes circulate in the hemolymph and react to stress by changing their number in the early stages. In this research, the effect of the aqueous extract of Mentha piperita, Salvia officinalis, Glycyrrhiza glabra and Crocus sativus on the immune system of Plodia interpuncetlla Hubner (Lepidoptera: Pyralidae) was investigated. Fourth instar larvae were treated with aqueous extracts of plants in concentrations of 10, 6 and 20%. hemocyte density and phenol oxidase activity were measured and recorded in two time periods of 24 and 48 hours. The results showed that the effect of different extracts on the total number of cells, plasmotocytes and granulocytes was significant compared to the control and increased with the increase in the concentration of the extracts in all treatments and at both test times. The total number of cells in the treatment of S. officinalis with a concentration of 6% after 48 hours and M. piperita with concentrations of 20% and 10% increased the most compared to the control. The number of granulocytes under the treatment of S. officinalis with a concentration of 6% after 48 hours showed the greatest increase compared to the control group. plasmotocytes also increased significantly under the effect of M. piperita treatment with concentrations of 10% and 20% after 24 hours and 20% concentration after 48 hours compared to the control. According to the evaluations, the 20% concentration of S. officinalis showed the highest increase in phenol oxidase activity compared to the control and other treatments. The obtained results confirmed the response of the P. interpunctella immune system to the introduction of plant extracts into the hemolymph, which was associated with significant changes in cell density and phenol oxidase enzyme activity. . | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| P. interpunctella, aqueous extract, immune, phenoloxidase | ||
| مراجع | ||
|
Abo–El–Saad, M. & El–Shafie, H. 2013. Dates: Postharvest science, processing technology and health benefits. In: Siddiq M, Aleid SM, Kader AA, (eds.). Insect Pests of Stored Dates and Their Management. West Sussex, UK: John Wiley & Sons, 81–104. Ajamhassani, M. 2015. Study on morphology and abundance of hemocytes in spurge hawk moth Hyles euphorbiae Linnaeus (Lepidoptera: Sphingidae). Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture), 38(3): 49–62. Ajamhassani, M. 2021. Hemocyte changes of larvae of the beet moth, Scrobipalpa ocellatella (Lepidoptera: Gelechiidae) affected by thermal stress. Journal of Entomological Society of Iran, 41(1): 101–103. (In Persian with English summary). Azimi, A.A, Delnavaz, H.B. & Mansour, G.A. 2006. Antifungal effect of aqueous alcoholic and phenolic extracts of seed and leaves of Sorghum bicolour against Fusarium solani, Fusarium poa in Persian. Medical Plants, 6(1): 26–32. Borges, A.R., Santos, P.N., Furtado, A.F. & Figueiredo, R.C. 2008. Phagocytosis of latex beads and bacteria by hemocytes of the triatomine bug Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduvidae). Micron, 39: 486–49. Cerenius, L. & Soderhall, K. 2004. The prophenol–oxidase–activating system in invertebrates. Immunological Review, 198: 116–126. Darnahal, E. Jamshidi. M., Jafarlou. M. & Hasheminia, S. 2020. Insecticidal and repellent effects of essential oils from different parts of Achillea millefolium against adult of Oryzaephilus surinamensis L. (Coleoptera: Silvanidae). Applied Plant Protection. Gaire, S., Scharf, M.E. & Gondhalekar, A.D. 2020. Synergistic Toxicity Interactions between Plant Essential Oil Components against the Common Bed Bug (Cimex lectularius L.). Insects, 11(2): 133–140. Ghasemi, V., Khoshnood Yazdi, A., Zaker Tavallaie, F. & Jalali Sendi, J. 2014. Effect of essential oils from Callistemon viminalis and Ferula gummosa on toxicity and on the hemocyte profile of Ephestia kuehniella (Lep.: Pyralidae). Archives of Phytopathology and Plant Protection, 47: 268–278. Gupta, A.P. 1979. Insect hemocytes: development, forms, functions and techniques. New York (NY): Cambridge University Press, p. 628. Hillyer, J.F. 2016. Insect immunology and hematopoiesis. Developmental and Comparative Immunology, 58: 102–118. Huang, F., Yang, Y.Y., Shi, M., Li, J.Y., Chen, Z.Q., Chen, F.S. & Chen, X.X. 2010. Ultrastructural and functional characterization of circulating hemocytes from Plutella xylostella larva:cell types and their role in phagocytosis. Tissue and Cell, 42(6): 360–364. Irfan, S., Rani, S., Ali Sani, I., Irfan, H., Shabbir, S. & Ahmed, N. 2016. Leaves and Flowers Insecticidal Activity Investigation of Salvia officinalis L. against Sitophilus oryzae L. COMU Journal of Agriculture Faculty, 4(2): 105–108 Izadi, Z., Esna–Ashari M., Ahmadvand, G., Davoodi, P. & Piri, K.H. 2009. Chemical Composition and Antibacterial Activity of the Essence oil of Peppermint (Mentha piperita L.), 14(3): 45–54. Khanikor, B. & Bora, D. 2012. Effect of plant based essential oil on immune response of silkworm, Antheraea assama Westwood (Lepidoptera: Saturniidae). Internanional Journal of Industrial Entomology, 25(2): 139–146. Koul, O., Walia, S. & Dhaliwal, G.S. 2008. Essential oils as green pesticides: potential and constraints. Biopesticides international, 4(1): 63–84. Leonard, C., Söderhäll, K. & Ratcliffe, N.A. 1985. Studies on prophenoloxidase and protease activity of Blaberus craniifer haemocytes. Insect Biochemistry, 15(6): 803–810. Li, T., Yan, D., Wang, X., Zhang, L. & Chen, P. 2019. Hemocyte changes during immune melanization in Bombyx mori infected with Escherichia coli. Insects, 10(9): 301. Ling, E., Shirai, K., Kanehatsu, R. & Kiguchi, K. 2004. Reexamination of phenoloxidase in larval circulating hemocytes of the silkworm, Bombyx mori. Tissue and Cell, 37: 101–107. Manjula, P., Lalitha, K., Vengateswari, G., Patil, J., Senthil, S.N. & Shivakumar, M.S. 2020. Effect of Manihot esculenta (Crantz) leaf extracts on antioxidant and immune system of Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae). Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 23: 1–9. Moghaddam, M. Pourbaigeb, M., Heydar Kourosh Tabarc, Farhadid, N. & Ahmadi Hosseinie, S. 2013. Composition and Antifungal Activity of Peppermint (Mentha piperita). Journal of Essential Oil, 16(4): 506–512. Mohandass, S., Arthur, F.H., Zhu, K.Y. & Throne, J.E. 2007. Biology and management of Plodia interpunctella (Lepidoptera: Pyralidae) in stored products. Journal of Stored Products Research, 43(3): 302–311. Nakahara, Y., Kanamori, Y., Kiuchi, M. & Kamimura, M. 2003. In vitro studies of hematopoiesis in the silkworm: cell proliferation in and hemocyte discharge from the hematopoietic organ. Journal of Insect Physiology, 49(10): 907–916. Nazeefullah, S., Dastagir, G. & Ahmad, B. 2014. Effect of cold-water extracts of Acacia modesta Wall. and Glycyrrhiza glabra Linn. on Tribolium castaneum and Lemna minor., Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences, 27(2): 217–222. Oftadeh, M., Sendi, J.J. & Ebadollahi, A. 2020. Toxicity and deleterious effects of Artemisia annua essential oil extracts on mulberry pyralid (Glyphodes pyloalis). Pesticide Biochemistry and Physiology, 170: 104702. Pipe, R.K. & Coles, J.A. 1995. Environmental contaminants influencing immune function in marine bivalve molluscs. Journal of Fish & Shellfish Immunology, 5: 581–595. Rahimi, V., Hajizadeh, J., Zibaee, A. & Sendi, J.J. 2019. Changes in immune responses of Helicoverpa armigera Hübner followed by feeding on Knotgrass, Polygonum persicaria agglutinin. Archives of Insect Biochemistry and Physiology, 101(1): 21543. Rajendran, S. & Sriranjini, V. 2008. Plant products as fumigants for stored–product insect control. Journal of Stored Products Research, 44(2): 126–135. Ribeiro, C. & Brehe ́lin, M. 2006. Insect haemocytes: what type of cell is that? Journal of Insect Physiology, 52: 417–429. Sadeghi, R., Hadizadeh Raeisi, N. & Jamshidnia, A. 2017. Immunological responses of Sesamia cretica to Ferula ovina essential. Journal of Insect Science, 17(1): 26, 1–5. Sharma, P.R., Sharma, O.P. & Saxena, B.P. 2003. Effect of neem gold on haemocytes of the tobacco armyworm, Spodoptera littura (Fabricius) (Lepidoptera: Noctuidae). Current Science, 84: 690–695. oil. Journal of Insect Science, 17(1): 1–5. Stanley, D.W. & Miller, J.S. 2006. Eicosanoid actions in insect cellular immune functions. Entomologia Experimentalis et Applicata, 119(1): 1–13. Strand, M.R. 2008. The insect cellular immune response. Insect Science, 15: 1–14. Tungjitwitayakul, J. & Tatun, N. 2017. Comparison of biological and biochemical parameters of eri–silkworms, Samia cynthia ricini (Lepidoptera: Saturniidae), reared on artificial and natural diets. Journal of Entomology and Zoology Studies, 5: 314–319. Wubie, M., Negash, A., Guadie, F., Molla, G., Kassaye, K. & Raja, N. 2014. Repellent and Insecticidal Activity of Mentha piperita (L.) Plant Extracts Against Cabbage Aphid [Brevicoryne brassicae Linn. (Homoptera: Aphididae). American–Eurasian Journal of Scientific Research, 9(6): 150–156 Yamashita, M. & Iwabuchi, K. 2001. Bombix mori prohemocytes division and differentiation in individual microcultures. Journal of Insect Physiology, 47: 325– 331. Zibaee, A. & Bandani, A. 2010. A study on the toxicity of a medicinal plant, Artemisia annua L.(Asteracea) extracts to the sunn pest, Eurygaster integriceps Puton (Hemiptera: Scutelleridae). Journal of Plant Protection Research. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 220 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 301 |
||