اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,873
تعداد مقالات32,555
تعداد مشاهده مقاله42,418,495
تعداد دریافت فایل اصل مقاله19,194,082
Razmarai Iranagh, A. A, Razmaraii, N., Aghaei, R, Shayegh, J, Mousaviyan, M, Ameghi Roudsary, A. (1402). Study on Propagation and Adaptation of EDS-76 Avian Adenovirus in Duck and SPF Primary Embryonic Chicken Cell Culture Comparison to Duck and SPF Embryonated Chicken Eggs. سامانه مدیریت نشریات علمی, 78(3), 1095-1105. doi: 10.22092/ari.2022.359899.2511
A. A Razmarai Iranagh; N. Razmaraii; R Aghaei; J Shayegh; M Mousaviyan; A Ameghi Roudsary. "Study on Propagation and Adaptation of EDS-76 Avian Adenovirus in Duck and SPF Primary Embryonic Chicken Cell Culture Comparison to Duck and SPF Embryonated Chicken Eggs". سامانه مدیریت نشریات علمی, 78, 3, 1402, 1095-1105. doi: 10.22092/ari.2022.359899.2511
Razmarai Iranagh, A. A, Razmaraii, N., Aghaei, R, Shayegh, J, Mousaviyan, M, Ameghi Roudsary, A. (1402). 'Study on Propagation and Adaptation of EDS-76 Avian Adenovirus in Duck and SPF Primary Embryonic Chicken Cell Culture Comparison to Duck and SPF Embryonated Chicken Eggs', سامانه مدیریت نشریات علمی, 78(3), pp. 1095-1105. doi: 10.22092/ari.2022.359899.2511
Razmarai Iranagh, A. A, Razmaraii, N., Aghaei, R, Shayegh, J, Mousaviyan, M, Ameghi Roudsary, A. Study on Propagation and Adaptation of EDS-76 Avian Adenovirus in Duck and SPF Primary Embryonic Chicken Cell Culture Comparison to Duck and SPF Embryonated Chicken Eggs. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1402; 78(3): 1095-1105. doi: 10.22092/ari.2022.359899.2511

Study on Propagation and Adaptation of EDS-76 Avian Adenovirus in Duck and SPF Primary Embryonic Chicken Cell Culture Comparison to Duck and SPF Embryonated Chicken Eggs

Archives of Razi Institute
مقاله 40، دوره 78، شماره 3، مرداد و شهریور 2023، صفحه 1095-1105    اصل مقاله (844.45 K)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ari.2022.359899.2511
نویسندگان
A. A Razmarai Iranagh1؛ N. Razmaraii* 2، 3؛ R Aghaei3؛ J Shayegh3؛ M Mousaviyan4؛ A Ameghi Roudsary4
1Young Researchers and Elite Club, Islamic Azad University, Shabestar, Shabestar, Iran
2Razi Vaccine and Serum Research Institute Northwest Branch, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Marand, Iran
3Department of Veterinary Medicine, Islamic Azad University, Shabestar Branch, Islamic Azad University, Shabestar, Iran
4Department of Cellular and Molecular Biotechnology, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
چکیده
Egg drop syndrome (EDS) is a major viral infectious poultry disease with severe economic losses in laying hens. The disease is caused by an adenovirus and can be transmitted horizontally and vertically. This study investigated the EDS virus (EDSV) infection in duck embryo fibroblasts (DEF), specific pathogen-free (SPF) embryo fibroblasts, and SPF egg embryos using different methods. The results were compared to the virus culture in duck and SPF chicken eggs. Duck and chicken fibroblast cells were used as the primary cell culture in Dulbecco’s Modified Eagle Medium, and the low-pathogenic duck adenovirus was used to infect the ducks and SPF fibroblasts primary cell cultures, as well as the duck and SPF eggs. The titer of the virus was measured by hemagglutination assay, ECID50, plaque-forming unit, and TCID50 methods. The results revealed that EDSV could proliferate in the chorioallantoic membrane of DEF cells and duck eggs, compared to the chorioallantoic membrane of chicken embryo fibroblasts (CEF) and SPF chicken eggs. The findings showed that duck egg embryos and primary DEF cell lines are more appropriate for EDSV replication, compared to CEF and SPF chicken eggs. This suggests that the use of DEF culture for producing avian adenovirus EDS-76 is a suitable alternative for the embryonic egg culture.
کلیدواژه‌ها
EDS virus؛ Adenovirus؛ Duck Embryo Fibroblast؛ Cell Culture
عنوان مقاله [English]
بررسی مقایسه ای تکثیر و سازگاری آدنوویروس پرندگان EDS-76 در کشت سلولی اولیه فیبروبلاست جنین اردک و تخم مرغ SPF
چکیده [English]
زمینه و هدف: سندرم کاهش تخم مرغ (EDS) یکی از مهم ترین بیماری های عفونی ویروسی طیور با خسارات اقتصادی شدید در مرغ های تخمگذار می باشد. این بیماری توسط یک آدنوویروس ایجاد می شود و می تواند به صورت افقی و عمودی انتقال یابد. در این مطالعه، ویروس سندرم کاهش تخم مرغ (EDSV) بر روی فیبروبلاست‌های جنین اردک (DEF)، فیبروبلاست‌های جنین SPF و جنین‌های تخم مرغ SPF تکثیر گردید و با استفاده از روشهای مختلف میزان رشد ویروس مورد بررسی قرار گرفت و نتایج با کشت ویروس در تخم اردک و تخم مرغ SPF مقایسه گردید.
مواد و روش‌ها: کشت سلول‌های اولیه فیبروبلاست جنین اردک و فیبروبلاست‌های جنین تخم مرغ SPF در محیط ‌کشت داده شد DMEM تکثیر شدند و از آدنوویروس کم بیماری‌زای اردک برای آلوده کردن کشت‌های اولیه اردک و فیبروبلاست‌های SPF و همچنین تخم اردک و تخم مرغ SPF مورد استفاده قرار گرفت. تیتر ویروس های کشت شده با استفاده از روش های HA، ECID50، PUK و TCID50 اندازه گیری شد.
یافته‌ها: نتایج مطالعه نشان داد که ویروس EDS به راحتی در غشای کوریوآلانتوئیک تخم مرغ اردک و سلولهای فیبروبلاست اولیه جنین اردک رشد می نماید درحالیکه در تخم‌ مرغهای SPF و سلولهای فیبروبلاست اولیه جنین تخم مرغ (CEF) SPF به سختی رشد می نماید.
نتیجه‌گیری: نتایج این مطالعه نشان داد که جنین‌ تخم اردک و رده سلولی فیبروبلاست اولیه تخم اردک در مقایسه با تخم مرغSPF و سلولهای فیبروبلاست اولیه جنین تخم مرغ SPF توانایی بیشتری برای تکثیر ویروس EDS را دارا می باشند و استفاده از تخم اردک و کشت سلولهای اولیه DEF برای تکثیر آدنوویروس پرندگان EDS-76 انتخاب مناسبی نسبت به استفاده از کشت جنین تخم مرغ و سلولهای فیبروبلاست اولیه جنین تخم مرغ (CEF) SPF می باشد.
کلیدواژه‌ها [English]
ویروس EDS, آدنوویروس, فیبروبلاست جنین اردک, کشت سلولی
سایر فایل های مرتبط با مقاله
مراجع
  1. Logue CM, Barberi NL, Vaillancourt JP. Main Challenges in Poultry Farming. Colibacillosis: Grupo Asís Biomedia SL; 2022.
  2. Tizard IR. Vaccines for Veterinarians E-Book: Elsevier Health Sciences; 2019.
  3. Burrell CJ, Howard CR, Murphy FA. Fenner and White's medical virology: Academic Press; 2016.
  4. Vinci T, Robert JS. Aristotle and modern genetics. J Hist Ideas. 2005;66(2):201-21.
  5. Pappas PG, Karchmer AW. WIlliam ernest dismukes, MD: 1939–2017. Trans Am Clin Climatol Assoc. 2018;129:xcv.
  6. Trombetta CM, Marchi S, Manini I, Lazzeri G, Montomoli E. Challenges in the development of egg-independent vaccines for influenza. Expert Rev Vaccines. 2019;18(7):737-50.
  7. Burrell CJ, Howard CR, Murphy FA. Virus Replication. In: Burrell CJ, Howard CR, Murphy FA, editors. Fenner and White's Medical Virology (Fifth Edition). London: Academic Press; 2017. p. 39-55.
  8. Farzaneh M, Hassani SN, Mozdziak P, Baharvand H. Avian embryos and related cell lines: A convenient platform for recombinant proteins and vaccine production. Biotechnol J. 2017;12(5).
  9. Favaro PF, Reischak D, Brandao PE, Villalobos EMC, Cunha EMS, Lara MCC, et al. Comparison among three different serological methods for the detection of equine influenza virus infection. Rev Sci Tech. 2017;36(3):789-98.
  10. Karakus U, Crameri M, Lanz C, Yanguez E. Propagation and Titration of Influenza Viruses. Methods Mol Biol. 2018;1836:59-88.
  11. Khalili Gheidariy M, Ghaderi M, Taghizadeh M, Shahkarami MK, Karimi Razakani H. Evaluation and Optimization of Chick Embryo Fibroblasts for Production of a Fowl Pox Vaccine Based on Cell Culture. Iran J Virol. 2020;14(2):6-15.
  12. Wang XP, Qi XF, Yang B, Chen SY, Wang JY. RNA-Seq analysis of duck embryo fibroblast cell gene expression during the early stage of egg drop syndrome virus infection. Poult Sci. 2019;98(1):404-12.
  13. Cromeans T, Sobsey MD, Fields HA. Development of a plaque assay for a cytopathic, rapidly replicating isolate of hepatitis A virus. J Med Virol. 1987;22(1):45-56.
  14. Zhang X, Zhong Y, Zhou Z, Liu Y, Zhang H, Chen F, et al. Molecular characterization, phylogeny analysis and pathogenicity of a Muscovy duck adenovirus strain isolated in China in 2014. Virology. 2016;493:12-21.
  15. Murphy FA, Gibbs EPJ, Horzinek MC, Studdert MJ. Veterinary virology: Elsevier; 1999.
  16. Huang J, Tan D, Wang Y, Liu C, Xu J, Wang J. Egg drop syndrome virus enters duck embryonic fibroblast cells via clathrin-mediated endocytosis. Virus Res. 2015;210:69-76.
  17. Swain P, Kataria JM, Verma KC. Biological characterisation of an Indian isolate of egg drop syndrome-76 virus. Res Vet Sci. 1993;55(3):396-7.
  18. Aghakhan S, Khodashenas M. Studies on egg drop syndrome in Iran. Arch Razi Inst. 1990;41:80-6.
  19. Copier J, Dalgleish A. Overview of tumor cell-based vaccines. Int Rev Immunol. 2006;25(5-6):297-319.
  20. Baust JM, Buehring GC, Campbell L, Elmore E, Harbell JW, Nims RW, et al. Best practices in cell culture: an overview. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2017;53(8):669-72.
  21. Zahoor MA, Khurshid M, Qureshi R, Naz A, Shahid M. Cell culture-based viral vaccines: current status and future prospects. 2016;11(7):549-62.
  22. McFerran JB. Egg drop syndrome, 1976 (EDS'76). Vet Q. 1979;1(4):176-80.
  23. Kleinberger T. Mechanisms of cancer cell killing by the adenovirus E4orf4 protein. Viruses. 2015;7(5):2334-57.
  1. Levine AJ. The common mechanisms of transformation by the small DNA tumor viruses: The inactivation of tumor suppressor gene products: p53. Virology. 2009;384(2):285-93.
  2. Begum J, Chowdhury E, Parvin R, Matin M, Giasuddin M, Bari A, et al. Detection of egg drop syndrome virus by polymerase chain reaction. Int J Livest Res. 2013;3(2):112-6.
  3. Kencana GAY, Suartha N, Kardena IM, Dewi G, Nurhandayani A, Syamsidar, et al. Potential and safety tests of egg drop syndrome candidate vaccine from Medan isolate, Indonesia. Vet World. 2018;11(11):1637-40.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,927
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 347


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب