اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,932
تعداد مقالات33,084
تعداد مشاهده مقاله43,732,412
تعداد دریافت فایل اصل مقاله20,244,017
Rezazadeh, A, Soleimanjahi, H, Soudi, S, Habibian, A. (1401). Comparison of the Effect of Adipose Mesenchymal Stem Cells-Derived Secretome with and without Reovirus in CT26 Cells. سامانه مدیریت نشریات علمی, 77(2), 615-622. doi: 10.22092/ari.2021.353845.1615
A Rezazadeh; H Soleimanjahi; S Soudi; A Habibian. "Comparison of the Effect of Adipose Mesenchymal Stem Cells-Derived Secretome with and without Reovirus in CT26 Cells". سامانه مدیریت نشریات علمی, 77, 2, 1401, 615-622. doi: 10.22092/ari.2021.353845.1615
Rezazadeh, A, Soleimanjahi, H, Soudi, S, Habibian, A. (1401). 'Comparison of the Effect of Adipose Mesenchymal Stem Cells-Derived Secretome with and without Reovirus in CT26 Cells', سامانه مدیریت نشریات علمی, 77(2), pp. 615-622. doi: 10.22092/ari.2021.353845.1615
Rezazadeh, A, Soleimanjahi, H, Soudi, S, Habibian, A. Comparison of the Effect of Adipose Mesenchymal Stem Cells-Derived Secretome with and without Reovirus in CT26 Cells. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1401; 77(2): 615-622. doi: 10.22092/ari.2021.353845.1615

Comparison of the Effect of Adipose Mesenchymal Stem Cells-Derived Secretome with and without Reovirus in CT26 Cells

Archives of Razi Institute
مقاله 14، دوره 77، شماره 2، خرداد و تیر 2022، صفحه 615-622    اصل مقاله (699.08 K)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ari.2021.353845.1615
نویسندگان
A Rezazadeh1؛ H Soleimanjahi* 1؛ S Soudi2؛ A Habibian1
1Department of Virology, Faculty of Medical Sciences, Tarbiat Modares University, Tehran, Iran
2Department of Immunology, Faculty of Medical Sciences, Tarbiat Modares University, Tehran, Iran
چکیده
Colorectal cancer is the fourth leading cause of cancer-related deaths that has significantly increased over the past three decades. New therapeutic approaches, such as oncolytic viruses, have become very imperative recently to destroy cancer cells. The use of mesenchymal stem cells (MSCs) secretome that is produced in response to variant conditions involves different paracrine molecules secretion that has therapeutic potential in several chronic diseases. Mesenchymal stem cells and their derivatives are employed as regenerative medicine; nevertheless, there is ambiguity in the function of these cells in the control of malignancy. This study aimed to examine the apoptotic effect of secretomes derived from MSCs affected by encompassing oncolytic reoviruses. Mesenchymal stem cells were cultured after separation from abdominal adipose tissue of BALB/c mice. After three passages, the cells were infected by reovirus at the multiplicity of infection of 1 plaque-forming unit per cell. Uninfected and infected secretomes with reovirus were collected separately. The colorectal cancer CT26 cells were confronted with uninfected secretome, infected secretions, reovirus as a positive control, and Dulbecco's Modified Eagle Medium/High Glucose as negative control separately. Finally, apoptosis and necrosis were evaluated by flow cytometry. The infected secretome with reovirus was capable to induce apoptosis more than the uninfected secretome in CT26. However, the supernatant of reovirus infected cells was more capable to induce cell death, in comparison to the infected secretome. Infected MSCs with oncolytic reovirus produced a type of condition media that enhanced apoptosis induction and could have a therapeutic effect on cancer cells. Nonetheless, tumoral cells confronted with the oncolytic reovirus showed more capability in inducing apoptosis in CT26 cells. As a result, the use of oncolytic virus and infected secretome are more effective than uninfected secretome in inducing apoptosis.
کلیدواژه‌ها
Oncolytic reovirus؛ Secretome؛ Colorectal cancer cell؛ Apoptosis؛ Cancer therapy
عنوان مقاله [English]
مقایسه اثر ترشحات سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق از بافت چربی آلوده و بدون آلودگی با ویروس انکولیتیک رئو درالقای آپوپتوز در سلول‌های CT26
چکیده [English]
سرطان روده بزرگ به‌عنوان چهارمین عامل اصلی مرتبط با مرگ و میر ناشی از سرطان می‌باشد که به‌میزان قابل توجهی طی سه دهه گذشته افزایش یافته است. اخیرا استفاده از رویکردهای درمانی جدید مانند ویروس‌های اونکولیتیک برای از بین بردن سلول‌های سرطانی بسیار ضروری می‌نمایند. ترشحات سلول‌های بنیادی مزانشیمی که در پاسخ به شرایط مختلف تولید می شوند، شامل مولکول‌های مختلف پاراکرین می‌باشند که دارای پتانسیل درمانی برای بیماری‌های مزمن می‌باشند. سلول‌های بنیادی مزانشیمی به عنوان یک فاکتور بازسازی‌کننده استفاده می‌شوند، اگرچه هنوز در عملکرد این سلول‌ها در کنترل بدخیمی‌ها ابهاماتی وجود دارد. در این مطالعه، هدف ما بررسی اثر آپوپتوتیک سکرتوم حاصل از سلول‌های بنیادی مزانشیمی است که با ویروس های انکولیتیک آلوده شده اند. سلول‌های بنیادی مزانشیمی پس از جدا شدن از بافت چربی شکمی موش‌های BALB / c کشت داده شدند. پس از سه مرحله پاساژ، سلول‌ها توسط رئوویروس اونکولیتیک با MOI:1 آلوده شدند. ترشحات غیر آلوده و ترشحات آلوده به ویروس به‌صورت جداگانه جمع آوری شدند. سلول‌های CT26 به‌عنوان سلول‌های مدل سرطان روده بزرگ با ترشحات غیرآلوده، ترشحات آلوده، رئوویروس اونکولیتیک بعنوان کنترل مثبت و DMEM/HG بعنوان کنترل منفی به طور جداگانه مواجه داده شدند. در نهایت، میزان آپوپتوز و نکروز در هرمورد توسط روش فلوسیتومتری ارزیابی شد. ترشحات آلوده به ویروس قادر به القای آپوپتوز بیش از ترشحات غیرآلوده در سلول‌های CT26 بودند. با این حال، میزان القا آپوپتوز در سلول‌های مواجه شده با خود رئوویروس اونکولیتیک در مقایسه با سلول‌های مواجه شده با ترشحات آلوده به ویروس بیشتر می‌باشد. ترشحات سلول‌های بنیادی مزانشیمی آلوده به انکولیتیک رئوویروس شرایطی را جهت افزایش القای آپوپتوز فراهم می‌آورند و می‌تواند بر روی سلول‌های سرطانی اثر درمانی داشته باشد. با این حال، هنگامی که ویروس انکولیتیک با سلول‌های توموری روبرو می‌شوند، توانایی بیشتری در ایجاد آپوپتوز در سلول‌های CT26 دارند. در نتیجه، از نظر القا آپوپتوز استفاده از اونکولیتیک ویروس و ترشحات آلوده به ویروس، مؤثرتر از سکروتوم غیر آلوده می‌باشند.
کلیدواژه‌ها [English]
اونکولیتیک رئوویروس, سکرتوم, سلول سرطان کلورکتال, آپوپتوز, سرطان درمانی
سایر فایل های مرتبط با مقاله
مراجع
  1. Dolatkhah R, Somi MH, Bonyadi MJ, Asvadi Kermani I, Farassati F, Dastgiri S. Colorectal cancer in Iran: molecular epidemiology and screening strategies. J Cancer Epidemiol. 2015;2015.
  2. Prendergast GC, Metz R, Muller AJ. Towards a genetic definition of cancer-associated inflammation: role of the IDO pathway. Am J Pathol. 2010;176(5):2082-7.
  3. Jhawar SR, Thandoni A, Bommareddy PK, Hassan S, Kohlhapp FJ, Goyal S, et al. Oncolytic viruses—natural and genetically engineered cancer immunotherapies. Front Oncol. 2017;7:202.
  4. Fukuhara H, Ino Y, Todo T. Oncolytic virus therapy: a new era of cancer treatment at dawn. Cancer Sci. 2016;107(10):1373-9.
  5. Gopisankar MG, Surendiran A. Oncolytic virotherapy – A novel strategy for cancer therapy. Egypt J Med Hum Genet. 2018;19(3):165-9.
  6. Seyed-Khorrami S-M, Soleimanjahi H, Soudi S, Habibian A. MSCs loaded with oncolytic reovirus: migration and in vivo virus delivery potential for evaluating anti-cancer effect in tumor-bearing C57BL/6 mice. Cancer Cell Int. 2021;21(1):1-19.
  7. Zenonos K, Kyprianou K. RAS signaling pathways, mutations and their role in colorectal cancer. World J Gastrointest Oncol. 2013;5(5):97-101.
  8. Phillips MB, Stuart JD, Rodriguez Stewart RM, Berry JT, Mainou BA, Boehme KW. Current understanding of reovirus oncolysis mechanisms. Oncolytic Virother. 2018;7:53-63.
  9. Connolly JL, Rodgers SE, Clarke P, Ballard DW, Kerr LD, Tyler KL, et al. Reovirus-induced apoptosis requires activation of transcription factor NF-κB. J Virol. 2000;74(7):2981-9.
  10. Clarke P, Meintzer SM, Gibson S, Widmann C, Garrington TP, Johnson GL, et al. Reovirus-induced apoptosis is mediated by TRAIL. J Virol. 2000;74(17):8135-9.
  11. Park J-S, Kim M. Reovirus safety study for proliferation and differentiation of human adipose-derived mesenchymal stem cells. J Microbiol. 2017;55(1):75-9.
  12. Huang S, Xu L, Sun Y, Wu T, Wang K, Li G. An improved protocol for isolation and culture of mesenchymal stem cells from mouse bone marrow. J Orthop Translat. 2015;3(1):26-33.
  13. McKee C, Chaudhry GR. Advances and challenges in stem cell culture. Colloids Surf B Biointerfaces. 2017;159:62-77.
  14. Lotfy A, Salama M, Zahran F, Jones E, Badawy A, Sobh M. Characterization of mesenchymal stem cells derived from rat bone marrow and adipose tissue: a comparative study. Int J Stem Cells. 2014;7(2):135-42.
  15. Vizoso F, Eiro N, Cid S, Schneider J, Perez-Fernandez R. Mesenchymal stem cell secretome: toward cell-free therapeutic strategies in regenerative medicine. Int J Mol Sci. 2017;18(9):1852.
  16. Alonso-Goulart V, Ferreira LB, Duarte CA, de Lima IL, Ferreira ER, de Oliveira BC, et al. Mesenchymal stem cells from human adipose tissue and bone repair: a literature review. Biotechnol Res Innov. 2018;2(1):74-80.
  17. Eiró N, Sendon-Lago J, Seoane S, Bermúdez MA, Lamelas ML, Garcia-Caballero T, et al. Potential therapeutic effect of the secretome from human uterine cervical stem cells against both cancer and stromal cells compared with adipose tissue stem cells. Oncotarget. 2014;5(21):10692.
  18. Wu X-B, Liu Y, Wang G-H, Xu X, Cai Y, Wang H-Y, et al. Mesenchymal stem cells promote colorectal cancer progression through AMPK/mTOR-mediated NF-κB activation. Sci Rep. 2016;6:21420.
  19. Yin L, Zhao C, Han J, Li Z, Zhen Y, Xiao R, et al. Antitumor effects of oncolytic herpes simplex virus type 2 against colorectal cancer in vitro and in vivo. Ther Clin Risk Manag. 2017;13:117.
  20. Kazimirsky G, Jiang W, Slavin S, Ziv-Av A, Brodie C. Mesenchymal stem cells enhance the oncolytic effect of Newcastle disease virus in glioma cells and glioma stem cells via the secretion of TRAIL. Stem Cell Res Ther. 2016;7(1):149.
  1. Banijamali RS, Soleimanjahi H, Soudi S, Karimi H, Abdoli A, Khorrami SMS, et al. Kinetics of Oncolytic Reovirus T3D Replication and Growth Pattern in Mesenchymal Stem Cells. Cell J. 2020;22(3).
  2. Nouroozi RV, Noroozi MV, Ahmadizadeh M. Determination of protein concentration using bradford microplate protein quantification assay. Dis Diagn. 2015;4(1):11-7.
  3. Wlodkowic D, Skommer J, Darzynkiewicz Z. Flow cytometry-based apoptosis detection. Apoptosis: Springer; 2009. p. 19-32.
  4. Elmore S. Apoptosis: a review of programmed cell death. Toxicol Pathol. 2007;35(4):495-516.
  5. Cattaneo R, Russell SJ. How to develop viruses into anticancer weapons. PLoS Pathog. 2017;13(3):1006190.
  6. Motalleb G. Virotherapy in cancer. Iran J Cancer Prev. 2013;6(2):101.
  7. Gong J, Mita MM. Activated ras signaling pathways and reovirus oncolysis: an update on the mechanism of preferential reovirus replication in cancer cells. Front Oncol. 2014;4:167.
28.          Ferreira JR, Teixeira GQ, Santos SG, Barbosa MA, Almeida-Porada G, Goncalves RM. Mesenchymal Stromal Cell Secretome: Influencing Therapeutic Potential by Cellular Pre-conditioning. Front Immunol. 2018;9:2837.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,738
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 626


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب