| تعداد نشریات | 285 |
| تعداد نشریات سازمان | 83 |
| تعداد شمارهها | 3,103 |
| تعداد مقالات | 34,621 |
| تعداد مشاهده مقاله | 49,644,523 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 80,083,376 |
فعالیت آنتیاکسیدانی عصاره هیدروالکلی گل داوودی (Chrysanthemum morifolium Ramat.) و فعالسازی مجدد آنزیم استیلکولیناستراز | ||
| تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران | ||
| مقاله 7، دوره 37، شماره 5 - شماره پیاپی 109، آذر و دی 1400، صفحه 795-808 اصل مقاله (886.61 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijmapr.2021.355260.3055 | ||
| نویسندگان | ||
| معصومه فلاوند1؛ فرانک هادی2؛ فریده آذربانی* 3؛ سیف اله بهرامی کیا4 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیوشیمی، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
| 2استادیار، ژنتیک مولکولی، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
| 3دانشیار، بیوشیمی، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
| 4استادیار، بیوشیمی، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
| چکیده | ||
| وظیفه آنزیم استیلکولیناستراز هیدرولیز استیلکولین است. این آنزیم توسط ترکیبهای ارگانوفسفره حشرهکشها و گازهای اعصاب بهطور برگشتناپذیر مهار میگردد. این مهار با تجمع استیلکولین در سیناپسهای کولینرژیک، منجر به تحریک بیش از حد و بحران کولینرژیک در شکاف سیناپسی میگردد. هدف از این مطالعه فعالسازی مجدد آنزیم کولیناستراز مهارشده توسط عصاره هیدروالکلی گل داوودی (Chrysanthemum morifolium Ramat.) است. تأثیر عصاره هیدروالکلی گل داوودی بر میزان فعالیت و بازیابی فعالیت آنزیم کولیناستراز به روش رنگسنجی المن ارزیابی شد. منبع آنزیم در این تحقیق، استیلکولیناستراز گلبول قرمز و بوتیریلکولیناستراز پلاسما بود. فعالیت آنتیاکسیدانی، شناسایی گروههای عاملی و تعیین ترکیبهای موجود در عصاره بهترتیب با استفاده از روشهای DPPH،FTIR و GC/MS تعیین گردید. نتایج نشان داد، میزان فعالسازی مجدد آنزیم بوتیریلکولیناستراز مهارشده (میزان از دست رفتن فعالیت آنزیم مهارشده = تا حدود 0.17 ± 91.95%) در تیمار غلظت یک میلیگرم بر میلیلیتر عصاره گل داوودی، 0.24 ± 49.16% بدست آمد. در این آزمایش، آنزیم استیلکولیناستراز بهوسیله پاراکسون تا حدود 0.45 ± 30.77% مهار شد، که عصاره گل داوودی در غلظت یک میلیگرم بر میلیلیتر این مهار را بازگرداند و باعث از بین رفتن سمّیت پاراکسون گردید. میزان IC50 در عصاره هیدروالکلی گل داوودی برای جمعکنندگی رادیکالهای آزاد DPPH برابر با 3 ± 483.67 میکروگرم بر میلیلیتر بدست آمد. از نتایج FTIR و GC/MS نیز چنین برمیآید که عصاره این گیاه سرشار از ترکیبهای فنولی حاوی گروههای هیدروکسیل و کربونیل است که احتمالاً همین ترکیبها نقش کلیدی را در فعالیت آنتیاکسیدانی عصاره این گیاه بر عهده دارند. یافتههای این پژوهش نشان داد که عصاره هیدروالکلی گل داوودی بهدلیل دارا بودن ترکیبهای فنولی دارای خاصیت آنتیاکسیدانی بسیار بالایی است و میتواند بهعنوان پادزهر برای سموم ارگانوفسفره نظیر پاراکسون توصیه شود. | ||
| کلیدواژهها | ||
| ترکیبهای ارگانوفسفره؛ آنزیم استیلکولین استراز؛ بازیابی فعالیت آنزیم؛ آنتیاکسیدان؛ FTIR | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Antioxidant activity of Chrysanthemum morifolium Ramat. hydroalcoholic extract and reactivation of acetylcholinesterase enzyme | ||
| نویسندگان [English] | ||
| M. Falavand1؛ F. Hadi2؛ F. Azarbani3؛ S. Bahramikia4 | ||
| 1M.Sc. student in Biochemistry, Department of Biology, Faculty of Science, Lorestan University, Khorramabad, Iran | ||
| 2Department of Biology, Faculty of Science, Lorestan University, Khorramabad, Iran | ||
| 3Department of Biology, Faculty of Science, Lorestan University, Khorramabad, Iran | ||
| 4Department of Biology, Faculty of Science, Lorestan University, Khorramabad, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| The acetylcholinesterase (AChE) function is to hydrolyze the acetylcholine (ACh). This enzyme is irreversibly inhibited by the organophosphate compounds of insecticides and nerve gases. This inhibition by the ACh accumulation in the cholinergic synapses leads to the overstimulation and cholinergic crisis in the synaptic cleft. This study was aimed at reactivating the inhibited cholinesterase (ChE) by the Chrysanthemum morifolium Ramat. hydroalcoholic extract. The effects of Ch. morifolium hydroalcoholic extract were evaluated on the activity and ChE reactivation by the Elman staining method. The erythrocyte AChE and plasma butyrylcholinesterase (BChE) were the enzyme sources in this study. The antioxidant activity, identification of functional groups, and determination of compounds in the extract were determined by DPPH, FTIR, and GC/MS methods, respectively. The results showed that the reactivation rate of inhibited BChE (the amount of losing activity in the enzyme inhibited = up to 91.95% ± 0.17) was obtained 49.16% ± 0.24 in the 1 mg.ml-1 of chrysanthemum extract treatment. In this experiment, the AChE enzyme was inhibited up to 30.77% ± 0.45 by paraoxon, which the 1 mg.ml-1 of chrysanthemum extract restored it and eliminated the paraoxon toxicity. The IC50 in the chrysanthemum hydroalcoholic extract for scavenging the DPPH free radicals was calculated 483.67 ± 3 μg.ml-1. The results of FTIR and GC/MS also showed that the extract of this plant is rich in the phenolic compounds containing the hydroxyl and carbonyl groups, which probably play a key role in the antioxidant activity of this plant extract. The findings of this study showed that the chrysanthemum hydroalcoholic extract had very high antioxidant properties due to its phenolic compounds and could be recommended as an antidote to the organophosphate toxins such as paraoxon. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Organophosphate compounds, acetylcholinesterase enzyme, enzyme activity recovery, antioxidant, FTIR | ||
| مراجع | ||
|
- Abdollahi, M., Mostafalou, S., Pournourmohammadi, S. and Shadnia, S., 2004. Oxidative stress and cholinesterase inhibition in Saliva and plasma of rats following subchronic exposure to malathion. Comparative Biochemistry and Physiology-Part C: Toxicology & Pharmacology, 137(1): 29-34. - Adams, R.P., 2007. Identification of Essential Oil Components by Gas Chromatography/ Mass Spectrometry. Allured Publ., Carol Stream, IL, 804p. - Anderson, N.O., Ascher, P.D., Widmer, R.E. and Luby, J.J., 1990. Rapid generation cycling of Chrysanthemum using laboratory seed development and embryo rescue techniques. Journal of American Society of Horticultural Sciences, 115(2): 329-336. - Benamar, H., Rached, W., Derdour, A. and Marouf, A., 2010. Screening of algerian medicinal plants for acetylcholinesterase inhibitory activity. Journal of Biological Sciences, 10: 1-9. - Blois, M.S., 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181(4617): 1199-1200. - DaSilva, J.A., 2004. Ornamental chrysanthemums: improvement by biotechnology. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 79(1): 1-18. - Dutta, H.M. and Meijer, H.J.M., 2003. Sublethal effects of diazinon on the structure of the testis of bluegill, Lepomis macrochirus: a microscopic analysis. Environmental Pollution, 125(3): 355-360. - Eddleston, M., Szinicz, L., Eyer, P. and Buckley, N., 2002. Oximes in acute organophosphorus pesticide poisoning: a systematic review of clinical trials. Qjm: Monthly journal of the Association of Physicians, 95(5): 275-283. - Ellman, G.L., Courtney, K.D., Andres Jr, V. and Featherstone, R.M., 1961. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity. Biochemical Pharmacology, 7(2): 88-95. - Farahmandfar, R. and Asnaashari, M., 2018. Assessment of antioxidant activity and kinetic oxidative parameters of syringic acid and gallic acid insunflower oil. Journal of Food Science and Technology, 15(83): 1-14. - Ghani, E., Mohammadi, M., Jafari, M., Khoshbaten, A. and Asgari, A., 2008. Evaluation of oxidative stress index in brain tissue of rats after expose to paraoxon. Kowsar Medical Journal, 13(1): 1-8. - Goel, A. and Dhawan, D.K., 2001. Zinc supplementation prevents liver injury in chlorpyrifos-treated rats. Biological trace element research, 82(1-3): 185. - Gunnell, D., Eddleston, M., Phillips, M.R. and Konradsen, F., 2007. The global distribution of fatal pesticide self-poisoning: systematic review. BMC Public Health, 7(1): 1-15. - Izadi, F., Jafari, M., Bahdoran, H., Asgari, A., Divsalar, A. and Salehi, M., 2014. The role of N-acetyl cysteine on reduction of diazinon-induced oxidative stress in rat liver and kidney. Journal of Rafsanjan University of Medical Sciences, 12(11): 895-906. - Jafari, M., Salehi, M., Ahmadi, S., Asgari, A., Abasnezhad, M. and Hajigholamali, M., 2012a. The role of oxidative stress in diazinon-induced tissues toxicity in Wistar and Norway rats. Toxicology Mechanisms and Methods, 22(8): 638-647. - Jafari, M., Salehi, M., Asgari, A., Ahmadi, S., Abbasnezhad, M., Hajihoosani, R. and Hajigholamali, M., 2012b. Effects of paraoxon on serum biochemical parameters and oxidative stress induction in various tissues of Wistar and Norway rats. Environmental Toxicology and Pharmacology, 34(3): 876-887. - Khazaie, S., Jafari, M., Heydari, J. and Salem, F., 2015. Investigating response of spleen and erythrocytes antioxidant defense system on the effects of n-acetyl cysteine against Paraoxon toxicity in rat. The Journal of Urmia University of Medical Sciences, 26(3): 176-184. - Kim, I.S., Koppula, S., Park, P.J., Kim, E.H., Kim, C.G., Choi, W.S. and Choi, D.K., 2009. Chrysanthemum morifolium Ramat (CM) extract protects human neuroblastoma SH-SY5Y cells against MPP+-induced cytotoxicity. Journal of Ethnopharmacology, 126(3): 447-454. - Kwong, T.C., 2002. Organophosphate pesticides: biochemistry and clinical toxicology. Therapeutic Drug Monitoring, 24(1): 144-149. - Lakshmanashetty, R.H., Nagaraj, V.B., Hiremath, M.G. and Kumar, V., 2010. In vitro antioxidant activity of Vitex negundo L. leaf extracts. Chiang Mai Journal of Science, 37(3): 489-497. - Lin, G.H., Lin, L., Liang, H.W., Ma, X., Wang, J.Y., Wu, L.P. and Xia, Q., 2010. Antioxidant action of a Chrysanthemum morifolium extract protects rat brain against ischemia and reperfusion injury. Journal of Medicinal Food, 13(2): 306-311. - Lin, L.Z. and Harnly, J.M., 2010. Identification of the phenolic components of Chrysanthemum flower (Chrysanthemum morifolium Ramat). Food Chemistry, 120(1): 319-326. - Malmir, S. and Jafari, M., 2014. Comparison of the effects of diazinon and paraoxon on the antioxidant system of rat lung. Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences, 19(2): 124-133. - Mosilova, L., Kuca, K., Jung, Y.S. and Jun, D., 2009. In vitro oxime- inhibited human acetylcholinesterase and butyrylcholinesterase. Clinical Toxicology, 47(6): 545-550. - Motafeghi, F.S., Ebrahimzadeh, M.A., Karbalaei, P. and Mohammadi, H., 2020. Effect of gallic acid on reactivation of acetylcholinesterase and batyrylcholinesterase inhibited by diazinon in vitro and in vivo. Journal of Mazandaran University Medical Science, 30(189): 1-13. - Mukherjee, P., Kumar, V., Mal, M. and Houghton, P., 2007. Acetylcholinesterase inhibitors from plants. Phytomedicine, 14: 289-300. - Naderi, G., Hajhossini, R., Abasi, M. and Mehrabian, A., 2015. Inhibitory effects of ethanolic extract of Cyperus rotandus on acetylcholinesrerase activity. Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences, 20(5): 102-109. - Nisreen, H., 2015. Flavonoid in flower and leaf of Chrysanthemum as antioxidants and therapeutic agents. International Human Research Journal, online at www.ihrj.org, ISSN, 2347-7067. - Oliver, C., 1972. Pharmacology of the Peripheral Autonomic Nervous System. Year book Medicalpublishers, 132p. - Sargazi, Z., Nikravesh, M.R., Jalali, M., Sadeghnia, H.R. and Rahimi Anbarkeh, F., 2015. The protective effect of vitamin E on serum and erythrocytes cholinesterase levels in poisoning of diazinon, in adult female rats. Journal of North Khorasan University of Medical Sciences, 7(4): 801-812. - Shadnia, S., Dasgar, M., Taghikhani, S., Mohammadirad, A., Khorasani, R. and Abdollahi, M., 2007. Protective effects of α-tocopherol and n-acetyl-cysteine on diazinon-induced oxidative stress and acetylcholinesterase inhibition in rats. Toxicology Mechanisms and Methods, 17(2): 109-115. - Shao, Q.S., Guo, Q.S., Deng, Y.M. and Guo, H.P., 2010. A comparative analysis of genetic diversity in medicinal Chrysanthemum morifolium based on morphology, ISSR and SRAP markers. Biochemical Systematics and Ecology, 38(6): 1160-1169. - Thakur, S.S., Garcia, G.E., Leader, H.N., Moorad-Doctor, D., Gupta, R., Gordon, R.K. and Doctor, B.P., 2005. Detoxification of Chemical Warfare Agents by the Plant Cholinergic System. Walter reed army inst of Research Silver spring, 166p. - Uzun, F.G. and Kalender, Y., 2011. Protective effect of vitamins c and e on malathion-induced nephrotoxicity in male rats. Gazi University Journal of Science, 24(2): 193-201. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,550 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 528 |
||