1گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران
2شرکت سپیدماکیان، رشت ، ایران
3گروه میکروبیولوژی و ایمنی شناسی ،دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران ، تهران ، ایران
چکیده
گلههای صنعتی طیور در طول مدت زمان پرورش در معرض عوامل عفونی مختلف ویروسی، باکتریایی، مایکوپلاسمایی و قارچی قرار میگیرند. واکسیناسیون و درگیریهای فیلدی از مصادیق این مورد میباشد. برای بررسی پاسخ واکسن و تشخیص آزمایشگاهی از جداسازی، ابزارهای سرمی و تشخیص مولکولی استفاده میکنند. در این میان تفسیر پاسخ سرمی یکی از چالشهای تشخیصی در بین آزمایشگاه و کلینیسینها میباشد. هدف این مطالعه بررسی تاثیر آلودگی ناشی از ویروس آنفلوانزای پرندگان بر روی نتایج واکسنهای نیوکاسل در گلههای طیور بود. برای این کار اثر عفونت بیماری تنفسی آنفلوانزا (H9N2) بر روی پاسخ سرمی برعلیه واکسن زنده نیوکاسل تحت بررسی و نتایج حاصل از آزمون ممانعت از هماگلوتیناسیون مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج نشان داد حضور ویروس آنفلوانزای پرندگان سبب افزایش پاسخ سرمی به واکسن نیوکاسل گردیده است و پراکندگی تیتر را افزایش داد بطوریکه در بررسی تیترها، برخی از تیترها در ظاهر نشاندهنده بیماری بود. میتوان اینگونه تحلیل نمود که ویروس آنفلوانزا احتمالا سبب ایجاد التهاب نای گردیده تا نفوذ ویروس واکسن در نای افزایش یابد و پاسخ ایمنی قویتری ایجاد کند. در واقع این مطالعه اثر همافزایی ویروس آنفلوانزای H9N2 و ویروس واکسن لاسوتا را نشان میدهد. در گلههای طیور و بویژه گوشتی با توجه به تعدد واکسنهای استفاده شده و حجم بالای چالش برای بررسی سرمی پیشنهاد میشود از پروفایل کامل سرمی برای تیتر همه عوامل تنفسی رایج صورت پذیرد.
Survey Interaction Between Avian Influenza Subtype H9N2 and NDV Lasota Vaccine in The Analysis of Serological Test Results
نویسندگان [English]
H Hosseini1؛ H Pour abbas2؛ Z. Ziafati Kafi3؛ N Sadri3؛ A Modiri Hamedan3؛ L Aghaeean3؛ F Jafari3؛ A Hojabr Rajeoni3؛ A Ghalyanchi Langeroudi3
1Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Karaj Branch, Islamic Azad University, Karaj, Iran
2Sepid Makian, Rasht, Iran
3Department of Microbiology and Immunology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
چکیده [English]
During the breeding season, commercial poultry flocks are exposed to various viral, bacterial, mycoplasma, and fungal infectious agents. Vaccination and field challenges are examples of this infectious. Isolation, serological test, and molecular diagnosis were used to evaluate the vaccine response and laboratory diagnosis. Analysis of the serum response is one of the diagnostic challenges between laboratories and clinicians. The aim of this study was to investigate the effect of avian influenza virus infection on the results of Newcastle vaccines in poultry flocks. To do this, the effect of influenza (H9N2) respiratory infection on serum response to live Newcastle disease vaccine was investigated and the results of hemagglutination inhibition test were analyzed. The results showed that the presence of avian influenza virus increased the serum response to the Newcastle disease vaccine and increased the titer's dispersion so that in the study of the titers, some of the titers appeared to indicate disease. It can be analyzed that the influenza virus may have caused inflammation of the trachea to increase the penetration of the vaccine virus into the trachea and create a stronger immune response. In fact, this study demonstrates the synergistic effect of the H9N2 influenza virus and the Lasota vaccine virus. In poultry farms and especially broiler farms, due to the multiplicity of vaccines used and the high volume of challenge, for serological testing, it is recommended that a complete serum profile be used to survey titers all common respiratory factors.
1. Alexander, D.J., J. G. Bell and R. G. Alders. 2004. A technology review: Newcastle disease, with special emphasis on its effect on village chickens. Available online at: http://www.fao.org/3/y5162e/y5162e00.htm . Accessed 01 January 2004. 2. Branton, S. and J. Simmons. 1992. Design of a poultry disease isolation facility with programmable environmental control. Applied engineering in agriculture 8: 695-699. 3. Ellakany, H.F., A.R Gado, A.R. Elbestawy, H,S. Abd El-Hamid, H.M. Hafez, M. E. Abd El-Hack, A.A. Swelum, A. Al-Owaimer and I.M. Saadeldin. 2018. Interaction between avian influenza subtype H9N2 and Newcastle disease virus vaccine strain (LaSota) in chickens. BMC veterinary research, 14: 358. 4. Ghalyanchilangeroudi, A., H. Hosseini, M. Jabbarifakhr, M. H. Fallah Mehrabadi, H. Najafi, S. A. Ghafouri, F. S. Mousavi, Z. Ziafati and A. Modiri. 2018. Emergence of a virulent genotype VIIi of Newcastle disease virus in Iran. Avian Pathology 47: 509-519. 5. Hassan, K.E., A. Ali, S. A. S. Shany and M. F. El-Kady. 2017. Experimental co-infection of infectiousbronchitis and low pathogenic avian influenza H9N2 viruses in commercial broiler chickens. Research in Veterinary Science 115:356-362. 6. Hosseini, H., M. H. B. Fard, S. Charkhkar and R. Morshed. 2015. Epidemiology of avian infectious bronchitis virus genotypes in Iran (2010–2014). Avian diseases 59: 431-435. 7.Hussain, M., H. Irshad and M. Khan. 2008. Laboratory diagnosis of transboundary animal diseases in Pakistan. Transboundary and emerging diseases 55: 190-195. 8. Kash, J.C. and J. K. Taubenberger.2015. The Role of Viral, Host, and Secondary Bacterial Factors in Influenza Pathogenesis. The American Journal of Pathology 185:1528-1536. 9. Landman, W.J. 2014. Is Mycoplasma synoviae outrunning Mycoplasma gallisepticum? A viewpoint from the Netherlands. Avian pathology 43: 2-8. 10. Marangon, S. and L. Busani. 2007. The use of vaccination in poultry production. Revue Scientifique et Technique-Office International des Epizooties 26: 265. 11. Mayahi, V. and M. Esmaelizad. 2017. Molecular evolution and epidemiological links study of Newcastle disease virus isolates from 1995 to 2016 in Iran. Archives of virology 162: 3727-3743. 12. Morrow, C. 2011. Mycoplasma ts vaccines–20 years field experience, pen trials and myths. International Hatchery Practice 25:13-15. 13. Sabouri, F., M. Vasfi Marandi and M. Bashashati. 2018. Characterization of a novel VIIl sub-genotype of Newcastle disease virus circulating in Iran. Avian Pathology 47: 90-99. 14. Van Leerdam, B. 2011. Diagnosis of IBV field challenge. Target 105:50-200.