اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,873
تعداد مقالات32,555
تعداد مشاهده مقاله42,418,912
تعداد دریافت فایل اصل مقاله19,194,535
Nouri, A, Bashashati, M, Mirzaie, S. Gh, Shoshtari, A, Banani, M. (1400). Isolation, Identification and Antimicrobial Susceptibility of Avibacterium Paragallinarum from Backyard Chicken in Retail Markets of Karaj and Tehran, Iran. سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(4), 1047-1053. doi: 10.22092/ari.2020.343173.1502
A Nouri; M Bashashati; S. Gh Mirzaie; A Shoshtari; M Banani. "Isolation, Identification and Antimicrobial Susceptibility of Avibacterium Paragallinarum from Backyard Chicken in Retail Markets of Karaj and Tehran, Iran". سامانه مدیریت نشریات علمی, 76, 4, 1400, 1047-1053. doi: 10.22092/ari.2020.343173.1502
Nouri, A, Bashashati, M, Mirzaie, S. Gh, Shoshtari, A, Banani, M. (1400). 'Isolation, Identification and Antimicrobial Susceptibility of Avibacterium Paragallinarum from Backyard Chicken in Retail Markets of Karaj and Tehran, Iran', سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(4), pp. 1047-1053. doi: 10.22092/ari.2020.343173.1502
Nouri, A, Bashashati, M, Mirzaie, S. Gh, Shoshtari, A, Banani, M. Isolation, Identification and Antimicrobial Susceptibility of Avibacterium Paragallinarum from Backyard Chicken in Retail Markets of Karaj and Tehran, Iran. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1400; 76(4): 1047-1053. doi: 10.22092/ari.2020.343173.1502

Isolation, Identification and Antimicrobial Susceptibility of Avibacterium Paragallinarum from Backyard Chicken in Retail Markets of Karaj and Tehran, Iran

Archives of Razi Institute
مقاله 34، دوره 76، شماره 4، آذر و دی 2021، صفحه 1047-1053    اصل مقاله (442.74 K)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ari.2020.343173.1502
نویسندگان
A Nouri* ؛ M Bashashati؛ S. Gh Mirzaie؛ A Shoshtari؛ M Banani
Department of Avian Disease Research and Diagnostic, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
چکیده
Avibacterium (Haemophilus) paragallinarum (Av. Paragallinarum) is the causative agent of Infectious Coryza (IC) in chickens. Despite the worldwide distribution of IC, no systematic study, to the best of our knowledge, was conducted on isolation and characterization of Av. Paragallinarum in Iran. The present study aimed to isolate and perform antibacterial susceptibility testing (AST) of IC agents from suspected backyard chickens with typical symptoms of IC in avian markets. From 18 collected choanal swab samples, four (22%) isolates of Av. Paragallinarum were detected by culture methods based on satellite growth on blood agar, which was confirmed by the biochemical reaction of Catalase and Oxidase tests and species-specific PCR (HPG-2). The hypervariable region of the hemagglutinin genes of 4 isolates was amplified and obtained sequences were deposited at a gene bank for more characterization. Meanwhile, 12 (66%) positive reactions were detected by observing expected 500 bpb and using PCR (HPG-2) on swab samples. Antibiotic susceptibility testing (AST) of obtained isolates were analyzed using the Kirby-Bauer disk diffusion method on Columbia agar with horse blood. Isolates were found to be resistant to amoxicillin, oxytetracycline, streptomycin, trimethoprim/sulfamethoxazole (up to 75%) and sensitive to cefalexin, ceftriaxone, enrofloxacin, florfenicol, gentamycin, linco-spectin, neomycin, doxycycline (50%), danofloxacin (75%), flumequine (50%), ofloxacin (75%). An intermediate growth inhibitionzone has been observed around antibiotic discs for ampicillin, colistin, erythromycin, penicillin, tiamulin (75%), tylosin (75%). In summary, to the best of our knowledge, this study is the first report of isolation and identification of Avibacterium paragallinarum from backyard chickens which may be a source of IC for commercial chicken flocks. Moreover, the prevalence of resistance to some antibacterial drugs of IC agents may impose an additional threat to the poultry industry. A more in-depth study is recommended to develop a low-cost autogenous IC vaccine for small-scale flocks of poultry to prevent and manage the disease and establish antimicrobial resistance.
کلیدواژه‌ها
Infectious Coryza؛ Avibacterium paragallinarum؛ PCR؛ Isolation؛ Antibiotic susecptibility test
عنوان مقاله [English]
جدا سازی ، شناسایی و حساسیت آنتی میکروبی باکتری آوی باکتریوم اراگالینارم عامل کریزای عفونی از مرغان بومی بازار شهرهای کرج و تهران -ایران
چکیده [English]
باکتری آوی باکتریوم ( هموفیلوس) پاراگالینارم عامل بیماری کریزای عفونی در ماکیان است. علی رغم انتشار جهانی این بیماری در ایران مطالعه کمی در خصوص جداسازی و شناسایی آن صورت گرفته است. این مطالعه بمنظور جداسازی و تعیین حساسیت انتی بیوتیکی جدایه های حاصل از مرغان بومی مشکوک به بیماری در بازار پرنده صورت گرفت. از مجموعه 18 مورد نمونه سواب ناحیه کامی تهیه شده تعداد 4 ( 22 درصد) جدایه باکتری مشکوک به اوی باکتریوم پاراگالینارم با ویژه گی های رشد اقماری و ازمون های بیوشیمیایی کاتالاز و اکسیداز بدست امد که با آزمایش PCR ویژه گونه اوی باکتریم مورد تایید قرار گرفتند. همچنین ازمون مستقیم PCR بر روی نمونه های سواب 12 مورد (66درصد) مثبت مشاهده شد. آزمون حساسیت آنتی بیوتیکی به روش انتشار دیسک کریر-بروئر با استفاده از ژلوز خون اسب محیط کلمبیا انجام شد. مقاومت به آموکسی سیلین، اکسی تتراسکلین، استرپتومایسین، تریمتوپریم/ سولفادیازول (75%) و حساسیت به سفالکسین سفتریاکسون، انروفلوکساسین، فلورفنیکل، جنتامایسین، لینکومایسین، نئومایسین، داکسی ساکلین(50%)، دانوفلوکساسین (75%) فلوموکوئین (50%)، افلوکساسین(75%) مشاهده شد. حاله مهار رشد متوسط باکتری در برابر آمپی سیلین، کولستین، اریترومایسین، پنی سیلین، تیامولین ( 75%) تایلوزین(75%) دیده شد. بطور خلاصه این مطالعه نشان داد شیوع کریزای عفونی در مرغان بومی شایع بوده و ممکن است از نظر بیماری منبع خطری برای گله های صنعتی و نیز مقاومت داروی اوی باکتریوم پاراگالینارم هم برای مرغان و بهداشت عمومی بطور غیر مستقیم باشد. مطالعه عمیق تری برای تهیه واکسن بومی ارزان قیمت ویژه مرغان بومی جهت کاهش بیماری و مقاومت های میکروبی توصیه میگردد.
کلیدواژه‌ها [English]
کریزای عفونی, آوی باکتریوم پاراگالینارم, واکشن زنجیره ای پلیمراز, جداسازی, آزمون حساسیت انتی بیوتیکی
سایر فایل های مرتبط با مقاله
مراجع
  1. Blackall PJ, Soriano‐Vargas E. Infectious Coryza and Related Bacterial Infections. In: swayne DE, Glisson JR, McDougald LR, Nolan LK, Suarez DL, Nair V, editors. Diseases of Poultry. 13th ed. Ames: Wiley-Blackwell; 2013. p. 859–74.
  2. Blackall pJ, Soriano‐Vargas E. Infectious Coryza and Related Bacterial Infections. In: David ES, editor. Diseases of Poultry. 2. 14th ed. Hoboken, NJ: Wiley-Blackwell; 2020. p. 891-906.
  3. Sandoval VE, Terzolo HR, Blackall PJ. Complicated infectious coryza outbreaks in Argentina. Avian Dis. 1994;38(3):672-8.
  4. Bozorgmeri fard MH. Determine the sensitivity of pathogenic bacteria in poultry to different antibiotics. Iran J Vet Med. 1980;35:101-88.
  5. Banani M, Pourbakhsh SA, Khaki P, Goodarzi H, Moazeni-Jula G, Ghodsian N. Isolation, Identification and antibiotic sensitivity of Haemophilus Paragallinarum isolates from commercial layer flocks affected by infectious coryza. [In Persian]. Pajouhesh Sazandegi. 2007;73 128-35.
  6. Blackall. Pj, Yamamoto r. Infectious Coryza. In: D. E. Swayne JRG, M. W. Jackwood, J. E. Pearson & W. M. Reed. , editor. A Laboratory Manual for the Isolation and Identification of Avian Pathogens 4th ed. Kendal/hunt: American Association of Avian Pathologists; 1998. p. 29-34.
  7. Moore D, D. D. Preparation of Genomic DNA from Bacteria. In: Wilson K, editor. In Current Protocols in Molecular Biology: John Wiley & Sons, Inc.; 2002. p. 2.1.-2.1.10.
  8. Nouri A, Banani M, Toroqi R. Immunogenicity of Infectious Coryza vaccine against a native isolate of Avibacterium paragallinarum from Iran. Iran Vet J. 2018;14(4):96-105.
  9. Chen X, Miflin JK, Zhang P, Blackall PJ. Development and application of DNA probes and PCR tests for Haemophilus paragallinarum. Avian Dis. 1996;40(2):398-407.
  10. Clothier KA, Stoute S, Torain A, Crossley B. Validation of a real-time PCR assay for high-throughput detection of Avibacterium paragallinarum in chicken respiratory sites. J Vet Diagn Invest. 2019;31(5):714-8.
  11. Chen X, Song C, Gong Y, Blackall PJ. Further studies on the use of a polymerase chain reaction test for the diagnosis of infectious coryza. Avian Pathol. 1998;27(6):618-24.
  12. Clothier KA, Torain A, Reinl S. Surveillance for Avibacterium paragallinarum in autopsy cases of birds from small chicken flocks using a real-time PCR assay. J Vet Diagn Invest. 2019;31(3):364-7.
  13. Kato K. Infectious coryza of chickens. V. Influence of Mycoplasma gallisepticum infection on chicken infected with Haemophilus gallinarum. Natl I Anim Health Q. 1965;5(4):183-9.
  14. Morales-Erasto V, Falconi-Agapito F, Luna-Galaz GA, Saravia LE, Montalvan-Avalos A, Soriano-Vargas E E, et al. Coinfection of Avibacterium paragallinarum and Ornithobacterium rhinotracheale in Chickens from Peru. Avian Dis. 2016;60(1):75-8.
  15. Paudel S, Hess M, Hess C. Coinfection of Avibacterium paragallinarum and Gallibacterium anatis in Specific-Pathogen-Free Chickens Complicates Clinical Signs of Infectious Coryza, Which Can Be Prevented by Vaccination. Avian Dis. 2017;61(1):55-63.
  16. Kishida N, Sakoda Y, Eto M, Sunaga Y, Kida H. Co-infection of Staphylococcus aureus or Haemophilus paragallinarum exacerbates H9N2 influenza A virus infection in chickens. Arch Virol. 2004;149(11):2095-104.
  1. Siddique A, S U R, I H, G M. Frequency Distribution of Opportunistic Avian Pathogens in Respiratory Distress Cases of Poultry. Pak Vet J. 2012;32(3):386-9.
  2. Dereja I, Hailemichael D. Infectious Coryza in Jimma Backyard Chicken Farms: Clinical and Bacteriological Investigation. J Vet Sci Technol. 2017;8(1):412.
  3. Hasan S, Ahmad K, Fawad N, Siddique B, Rehman H. Current respiratory disease problem and the probes in chicken. Pak Vet J. 2002;22:17-20.
  4. Findik A, Yardimci H. The comparison of agglutination, hemagglutination inhibition and indirect hemagglutination tests in the serological diagnosis of infectious coryza in chickens. In turkish. Ankara Üniv Vet Fak. 2010; 57:69-72.
  5. Rashid RA, Pociecha JZ. Epidemiological study of an outbreak of infectious coryza on a poultry farm in Iraq. Avian Dis. 1984;28(1):235-7.
  6. Patil VV, Mishra D, Mane DV. 16S ribosomal RNA sequencing and molecular serotyping of Avibacterium paragallinarum isolated from Indian field conditions. Vet World. 2017;10(8):1004-7.
  7. Patil VV, Mishra D, Mane DV. Virulence pattern of Avibacterium paragallinarum isolates studied from Indian field condition. Int J Livest Res. 2017;7(2):201-7.
  8. Khatun MM, Lijon MB, Islam MA, Sultana N. Detection of antibiotic resistant Avibacterium paragallinarum from broiler chickens in Bangladesh. J Adv Vet Anim Res. 2016;3(2):173-7.
  9. Luna-Galaz GA, Morales-Erasto V, Peñuelas-Rivas CG, Blackall PJ, Soriano-Vargas E. Antimicrobial Sensitivity of Avibacterium paragallinarum Isolates from Four Latin American Countries. Avian Dis. 2016;60(3):673-6.
  10. Nhung NT, Chansiripornchai N, Carrique-Mas JJ. Antimicrobial Resistance in Bacterial Poultry Pathogens: A Review. Front Vet Sci. 2017;4:126.
27.          Blackall PJ, Christensen H, Bisgaard M. Unusual growth variants of Avibacterium paragallinarum. Aust Vet J. 2011;89(7):273-5.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,652
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 936


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب