اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,920
تعداد مقالات32,927
تعداد مشاهده مقاله43,412,718
تعداد دریافت فایل اصل مقاله19,889,153
Ebrahimi-Jam, M. H, Keyvanfar, H, Varshovi, H. R, Seyfi Abad Shapoori, M. R, Lotfi, M. (1400). Development and Evaluation of an Indirect Capripoxvirus ELISA Based on Truncated P32 Protein Expressed in E. coli. سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(3), 471-485. doi: 10.22092/ari.2020.343355.1501
M. H Ebrahimi-Jam; H Keyvanfar; H. R Varshovi; M. R Seyfi Abad Shapoori; M Lotfi. "Development and Evaluation of an Indirect Capripoxvirus ELISA Based on Truncated P32 Protein Expressed in E. coli". سامانه مدیریت نشریات علمی, 76, 3, 1400, 471-485. doi: 10.22092/ari.2020.343355.1501
Ebrahimi-Jam, M. H, Keyvanfar, H, Varshovi, H. R, Seyfi Abad Shapoori, M. R, Lotfi, M. (1400). 'Development and Evaluation of an Indirect Capripoxvirus ELISA Based on Truncated P32 Protein Expressed in E. coli', سامانه مدیریت نشریات علمی, 76(3), pp. 471-485. doi: 10.22092/ari.2020.343355.1501
Ebrahimi-Jam, M. H, Keyvanfar, H, Varshovi, H. R, Seyfi Abad Shapoori, M. R, Lotfi, M. Development and Evaluation of an Indirect Capripoxvirus ELISA Based on Truncated P32 Protein Expressed in E. coli. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1400; 76(3): 471-485. doi: 10.22092/ari.2020.343355.1501

Development and Evaluation of an Indirect Capripoxvirus ELISA Based on Truncated P32 Protein Expressed in E. coli

Archives of Razi Institute
مقاله 11، دوره 76، شماره 3، آذر 2021، صفحه 471-485    اصل مقاله (669.61 K)
نوع مقاله: Original Articles
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ari.2020.343355.1501
نویسندگان
M. H Ebrahimi-Jam1؛ H Keyvanfar* 1؛ H. R Varshovi2؛ M. R Seyfi Abad Shapoori3؛ M Lotfi4
1Department of Pathobiology, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
2Department of Animal Viral Vaccine, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
3Department of Microbiology Faculty of Veterinary Medicine of Shahid Chamran, University of Ahvaz, Ahvaz, Iran
4Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
چکیده
As notifiable diseases, lumpy skin disease (LSD), sheep pox (SPP), and goat pox (GTP) are associated with a profound effect on cattle, sheep, and goat farming industries. Development of the ELISA method could effectively facilitate serodiagnosis of the infected animals. This study aimed to develop an ELISA system based on the recombinant full-length and truncated P32 protein (Tr.P32) of goat pox virus. The P32 protein was expressed in Rosetta strain of E. coli using pET24a+ vector and evaluated by SDS-PAGE and Western blotting. Then, Tr.P32 was purified by Ni-NTA affinity chromatography under denaturing conditions and used to develop a capripoxvirus-specific ELISA. Checkerboard titration and receiver-operating characteristic (ROC) analysis were used to optimize the ELISA system and determine diagnostic specificity and sensitivity, respectively. The diagnostic potential of the developed ELISA was evaluated using positive and negative control sera collected from goat, sheep, and cattle. Results showed that the expression level of full-length P32 recombinant protein was negligible, while Tr.P32, a ~ 31 kDa recombinant protein, was expressed up to 0.270-0.300 mg/200 mL of culture media. The results of checkerboard titration revealed that 675 ng/well of Tr.P32 antigen and 1:10 dilution of control sera (anti GTPV HIS and healthy goat sera) caused maximum difference in absorbance between positive and negative goat sera. The recombinant Tr.P32 showed good reactions with antibodies against GTP virus (GTPV), SPP virus (SPPV), and LSD virus (LSDV), whereas no cross-reactions with anti-Orf virus antibodies were detected. By comparing with the neutralization index (NI), cut off, diagnostic sensitivity and specificity of the developed indirect-ELISA were estimated, 0.397, 94% and 96.6%, respectively. These findings indicate that the ELISA system based on Tr.P32 protein could potentially be used in sero-surveillance of all capripoxviruses; however, further investigations are required.
کلیدواژه‌ها
ELISA؛ goat pox؛ lumpy skin disease؛ P32 protein؛ sheep pox
عنوان مقاله [English]
راه اندازی و ارزیابی الایزای غیرمستقیم ویروس های کاپری پاکس با استفاده از بیان پروتئین P32 کوتاه شده در Ecoli
چکیده [English]
بیماری لامپی‌اسکین (LSD)، آبله‌ی گوسفندی (SPP) و آبله بزی (GTP)، به‌عنوان بیماری‌های اخطارکردنی، آثار شگرفی بر صنعت پرورش گاو، گوسفند و بز دارد. ایجاد و راه‌اندازی روش الایزا می‌تواند به‌طور موثری به تشخیص سرمی حیوانات آلوده کمک نماید. این پژوهش با هدف راه‌اندازی یک سیستم الایزا بر اساس پروتئین‌های نوترکیب P32 کامل و کوتاه شده (Tr.P32) ویروس آبله‌ی بزی انجام شد. پروتئین P32 با استفاده از وکتور pET24a+ در سویه Rostta باکتری Ecoli بیان شد و با استفاده از روش‌های SDS-PAGE و وسترن‌بلاتینگ ارزیابی شد. سپس Tr.P32 در شرایط واسرشته‌سازی با استفاده از روش Ni-NTA کروماتوگرافی افینیتی خالص‌سازی، و برای راه‌اندازی الایزای اختصاصی ویروس‌های کاپری‌پاکس استفاده شد. سپس با روش تیتراسیون چکربورد و آنالیز ROC به ترتیب برای بهینه‌سازی سیستم الایزا و تعیین اختصاصیت و حساسیت آن استفاده شد. پتانسیل تشخیصی سیستم الایزای طراحی‌شده با استفاده از سرم‌های کنترل مثبت و منفیِ جمع‌آوری شده از بز، گوسفند و گاو ارزیابی شد. نتایج نشان داد که بیان پروتئین کامل P32 ناچیز بود در حالی‌که Tr.P32، به عنوان یک پروتئین نوترکیب 31 کیلو دالتونی، تا سطح 300/0-270/0 میلی‌گرم به ازای هر 200 میلی‌لیتر محیط کشت بیان شد. نتایج بهینه‌سازی با روش چکربورد نشان داد که 675 نانوگرم Tr.P32 به ازای هر چاهک و رقت 1:10 از سرم‌های کنترلی (سرم‌های هایپرایمیون ضد ویروس آبله‌ی بزی و سرم‌های غیر ایمن) بیشترین اختلاف در جذب نوری بین نمونه‌های سرمی مثبت و منفی بزی را در پی داشت. پروتئین نوترکیب Tr.P32 واکنش خوبی با آنتی‌بادی علیه ویروس‌های آبله‌ی بزی (GTPV)، آبله‌ی گوسفندی (SPPV) و ویروس عامل LSD (LSDV) داشت، در حالی‌که هیچ‌گونه واکنش متقاطعی با ویروس Orf نشان نداد. با مقایسه نتایج شاخص خنثی‌سازی (NI)، cut off، و حساسیت و اختصاصیت تشخیصی سیستم الایزای غیرمستقیم طراحی شده به ترتییب 397/0، 94% و 6/96 درصد اندازه‌گیری شد. این یافته‌ها نشان داد که سیستم الایزای طراحی‌شده بر اساس پروتئین Tr.P32 می‌تواند برای استفاده در تشخیص سرمی همه‌ی ویروس‌های کاپری-پاکس استفاده شود؛ با این حال، لازم است مطالعات بیشتری در این زمینه انجام شود.
کلیدواژه‌ها [English]
الایزا, آبله بزی, بیماری لامپی اسکین, پروتئین P32, آبله گوسفندی
مراجع
  1. Diallo A, Viljoen GJ. Genus capripoxvirus. Poxviruses: Springer; 2007. p. 167-81.
  2. Murphy FA, Fauquet CM, Bishop DH, Ghabrial SA, Jarvis AW, Martelli GP, et al. Virus taxonomy: classification and nomenclature of viruses: Springer Science and Business Media; 2012.
  3. Davies FG. Lumpy skin disease, an African capripox virus disease of cattle. Br Vet J. 1991;147(6):489-503.
  4. Tuppurainen ESM, Venter EH, Shisler JL, Gari G, Mekonnen GA, Juleff N, et al. Review: Capripoxvirus Diseases: Current Status and Opportunities for Control. Transbound Emerg Dis. 2017;64(3):729-45.
  5. OIE. Manual of   Diagnostic   Tests   and   Vaccines   for Terrestrial  Animals. OIE: Paris; 2017.
  6. Babiuk S, Bowden T, Boyle D, Wallace DB, Kitching R. Capripoxviruses: an emerging worldwide threat to sheep, goats and cattle. Transbound Emerg Dis. 2008;55(7):263-72.
  7. Heine HG, Stevens MP, Foord AJ, Boyle DB. A capripoxvirus detection PCR and antibody ELISA based on the major antigen P32, the homolog of the vaccinia virus H3L gene. J Immunol Methods. 1999;227(1):187-96.
  8. Ireland DC, Binepal YS. Improved detection of capripoxvirus in biopsy samples by PCR. J Virol Methods. 1998;74(1):1-7.
  9. Lamien CE, Lelenta M, Goger W, Silber R, Tuppurainen E, Matijevic M, et al. Real time PCR method for simultaneous detection, quantitation and differentiation of capripoxviruses. J Virol Methods. 2011;171(1):134-40.
  10. Gari G, Biteau-Coroller F, LeGoff C, Caufour P, Roger F. Evaluation of indirect fluorescent antibody test (IFAT) for the diagnosis and screening of lumpy skin disease using Bayesian method. Vet Microbiol. 2008;129(3-4):269-80.
  11. Kitching R, Hammond J, Black D. Studies on the major common precipitating antigen of capripoxvirus. J Gen Virol. 1986;67(1):139-48.
  12. Chand P, Kitching R, Black D. Western blot analysis of virus-specific antibody responses for capripox and contagious pustular dermatitis viral infections in sheep. Epidemiol Infect. 1994;113(2):377-85.
  13. Madhavan A, Venkatesan G, Kumar A. Capripoxviruses of small ruminants: current updates and future perspectives. Asian J Anim Vet Adv. 2016;11(12):757-70.
  14. Haegeman A, De Vleeschauwer A, De Leeuw I, Vidanović D, Šekler M, Petrović T, et al. Overview of diagnostic tools for Capripox virus infections. Prev Vet Med. 2019:104704.
  15. Babiuk S, Wallace D, Smith S, Bowden T, Dalman B, Parkyn G, et al. Detection of antibodies against capripoxviruses using an inactivated sheeppox virus ELISA. Transbound Emerg Dis. 2009;56(4):132-41.
  16. Tulman ER, Afonso CL, Lu Z, Zsak L, Sur JH, Sandybaev NT, et al. The Genomes of Sheeppox and Goatpox Viruses. J Virol. 2002;76(12):6054-61.
  17. Tulman E, Afonso C, Lu Z, Zsak L, Kutish G, Rock DL. Genome of lumpy skin disease virus. J Virol. 2001;75(15):7122-30.
  18. Carn VM, Kitching RP, Hammond JM, Chand P. Use of a recombinant antigen in an indirect ELISA for detecting bovine antibody to capripoxvirus. J Virol Methods. 1994;49(3):285-94.
  19. Bowden TR, Coupar BE, Babiuk SL, White JR, Boyd V, Duch CJ, et al. Detection of antibodies specific for sheeppox and goatpox viruses using recombinant capripoxvirus antigens in an indirect enzyme-linked immunosorbent assay. J Virol Methods. 2009;161(1):19-29.
  1. Venkatesan G, Teli MK, Sankar M, Kumar A, Dashprakash M, Arya S, et al. Expression and evaluation of recombinant P32 protein based ELISA for sero-diagnostic potential of capripox in sheep and goats. Mol Cell Probes. 2018;37:48-54.
  2. Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. Molecular cloning: a laboratory manual: Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 1989.
  3. da Fonseca FG, Wolffe EJ, Weisberg A, Moss B. Characterization of the vaccinia virus H3L envelope protein: topology and posttranslational membrane insertion via the C-terminal hydrophobic tail. J Virol. 2000;74(16):7508-17.
  4. Singh K, Gittis AG, Gitti RK, Ostazeski SA, Su H-P, Garboczi DN. The vaccinia virus H3 envelope protein, a major target of neutralizing antibodies, exhibits a glycosyltransferase fold and binds UDP-glucose. J Virol. 2016;90(10):5020-30.
  5. Kumar A, Venkatesan G, Kushwaha A, Kumar PS, Ramakrishnan M, Dhar P. Expression and Purification of Recombinant Immunogenic Proteins of Goat Poxvirus in Prokaryotic System. Int J Curr Microbiol App Sci. 2019;8(1):1984-90.
  6. Tuppurainen E, Venter EH, Shisler JL, Gari G, Mekonnen G, Juleff N, et al. Capripoxvirus diseases: current status and opportunities for control. Transbound Emerg Dis. 2017;64(3):729-45.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,999
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 856


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب