اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,999
تعداد مقالات33,582
تعداد مشاهده مقاله44,292,059
تعداد دریافت فایل اصل مقاله22,155,512
عالمیان, عباس, خالصی, بهمن, ابراهیمی, محمد مجید, مسعودی, شهین. (1400). ارزیابی کارایی واکسن آبله طیور موسسه رازی در پولت تخمگذار. سامانه مدیریت نشریات علمی, 34(1), 6-14. doi: 10.22092/vj.2020.124754.1546
عباس عالمیان; بهمن خالصی; محمد مجید ابراهیمی; شهین مسعودی. "ارزیابی کارایی واکسن آبله طیور موسسه رازی در پولت تخمگذار". سامانه مدیریت نشریات علمی, 34, 1, 1400, 6-14. doi: 10.22092/vj.2020.124754.1546
عالمیان, عباس, خالصی, بهمن, ابراهیمی, محمد مجید, مسعودی, شهین. (1400). 'ارزیابی کارایی واکسن آبله طیور موسسه رازی در پولت تخمگذار', سامانه مدیریت نشریات علمی, 34(1), pp. 6-14. doi: 10.22092/vj.2020.124754.1546
عالمیان, عباس, خالصی, بهمن, ابراهیمی, محمد مجید, مسعودی, شهین. ارزیابی کارایی واکسن آبله طیور موسسه رازی در پولت تخمگذار. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1400; 34(1): 6-14. doi: 10.22092/vj.2020.124754.1546

ارزیابی کارایی واکسن آبله طیور موسسه رازی در پولت تخمگذار

تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک
مقاله 2، دوره 34، شماره 1، فروردین 1400، صفحه 6-14    اصل مقاله (1.48 M)
نوع مقاله: مقاله کامل
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/vj.2020.124754.1546
نویسندگان
عباس عالمیان1؛ بهمن خالصی* 2؛ محمد مجید ابراهیمی2؛ شهین مسعودی2
1بخش تحقیق و تولید واکسن های ویروسی طیور، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایرانکشاورزی، کرج، ایران
2بخش تحقیق و تولید واکسن های ویروسی طیور، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
چکیده
موثرترین راه پیشگیری بیماری آبله طیور واکسیناسیون می‌باشد و هدف از انجام این مطالعه تعیین میزان ایمنی ایجاد شده توسط واکسن آبله طیور موسسه رازی و  نیز مشخص نمودن کارایی واکسن مذکور در مقابل عامل بیماری‌زا می‌باشد. مطالعه حاضر در دو مرحله شامل واکسیناسیون جوجه‌های تحت آزمایش در فارم و مرحله دوم شامل آزمایش چالش بود که  در پولت‌های واکسینه شده انجام گرفت. بدین منظور جوجه‌های یک سالن شصت هزارتایی پولت نژاد مرغ تخمگذار بونز (Bovans) با واکسن آبله طیور موسسه رازی به روش تلقیح در پرده بال واکسینه شدند. هفت تا  10 روز پس از انجام واکسیناسیون پاسخ گله به واکسن با بررسی %10 کل سالن مرغداری صورت پذیرفت و میزان وجود  Take % 7/96 بود. جهت  آزمایش چالش در دو گروه پولت 30 تایی در دو سالن مجزا که گروه اول شامل پولت واکسینه و گروه دوم که واکسنی دریافت نکرده بودند ویروس آبله تلقیح شد. گروه شاهد همگی علائم بیماری ولی تمام پرندگان گروه واکسینه فاقد علائم بیماری بودند. نتایج این مطالعه نشان داد که واکسن آبله موسسه رازی دارای ایمنیت و کارایی بسیار بالایی می‌باشد.
کلیدواژه‌ها
واکسن آبله طیور؛ موسسه رازی؛ ارزیابی ایمنی؛ چالش
عنوان مقاله [English]
Efficacy evaluation of Razi Institute Fowl pox vaccine in laying hen pullet
نویسندگان [English]
A. Alemian1؛ B. Khalesi2؛ M. M. Ebrahimi2؛ Sh. Masoudi2
1Master of Science Lab, Department of Research and Production of Poultry Viral Vaccine, Razi Vaccine and Serum Research institute, Agricultural Research Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran
2Assistant Professor, Department of Research and Production of Poultry Viral Vaccine, Razi Vaccine and Serum Research institute, Agricultural Research Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran.
چکیده [English]
The most effective way to prevent fowl pox disease is to vaccinate and the aim of this study was to determine the immunity level of fowl pox vaccine and also to determine the efficacy of the vaccine against the pathogenic agent, which seems necessary and important to do so. The experiments of this study are summarized in two sections. The first stage includes the vaccination of the experienced chicks in the farm and the evaluation of the effect of the vaccine on the farm, and the second phase included a challenge test carried out in the vaccinated pullets. In order to realize this, fowl pox vaccine of the Razi Institute, which is live attenuated, was inoculated into a curtain under the wing in a layer flock with sixty thousands of Bowans strain laying hen farm was used for testing. Seven to ten days after vaccination, the immune response of the herd was investigated in 10% of the layer flock was taken and the percentage was 96.7%. Then, in order to the challenge test, 30 of these pullets were divided into two separate halls, the first group consisting of vaccinated pullets and the second group that did not inoculate the vaccine. The pathogenic virus was inoculated to them and the control group showed all the symptoms of the disease, and all the birds in the control group had no symptoms. From the above experiments, it is concluded that fowl pox vaccine of the Razi Institute has suitable efficacy.
کلیدواژه‌ها [English]
Fowl pox vaccine, Razi institute, Evaluation of the immunity, challenge
مراجع

1. Afonso, C. L., E. R. Tulman, Z., Lu, L. Zsak, G. F. Kutishand and D. L. Rock. 2000. The genome of fowlpox virus. Journal of Virology 74: 38153831. 3.
2. Bolte, A. L., J. Meurer and E.F. Kaleta. 1999. Avian host spectrum of avipoxviruses. Avian Pathology 28:415 - 432.
3. Boulanger, D.,T.Smith and M.A. Skinner. 2000. Morphogenesis and release of Fowl Pox Virus. Journal of Genenetic Virology 81: 675 - 687.
4. Condit, R. C. 2007. Principles of Virology. pp: 27-57. In: Knipe DM, Howley PM, (Eds). Fields Virology, 5th ed, Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins.
5. Ebrahimi, M. M., Shahsavandi, S., Masoudi, S., Ghodsian, N., Hashemi, A., Hablalvarid, M. H., Hatami, A. R. 2012. Development of a Multiplex Polymerase Chain Reaction for Differential Diagnosis of Canary Pox Virus. Iranian Journal of Virology 6 : 19-23.
6. Ebrahimi, M. M., Shahsavandi, S., Pourbakhash, A., Masoudi, S., Momayez, R., Ebrahimi,S.R.2004. Isolation, Identification and Characterization of Pox Viruses Isolated from Turkey. Research project number 82-0420631000-01.
7. El-Mahdy, S. S., Mikheal, C. 2014. Efficacy of fowl pox vaccines against Egyptian isolated strain during 2012. Veteterinary World 7 : 656-660.
8. Fatunmbi, O.O. and W.M. Reed. 1996. Evaluation of a Commercial Modified Live Virus Fowl Pox Vaccine for the Control of "Variant" in Fowl Poxvirus Infections. Avian Diseases 40: 582-587.12.
9. Gholami-Ahangaran, M., N. Zia-Jahromi and A. Namjoo. 2014. Molecular detection of avian pox virus from nodular skin and mucosal fibrinonecrotic lesions of Iranian backyard poultry. Tropical Animal Health and Production 46: 349-353.
10. Gilhare ,V.R., S.D Hirpurkar ., A, Kumar., S.K, Naik .,T, Sahu . 2015. Pock forming ability of fowl pox virus isolated from layer chicken and its adaptation in chicken embryo fibroblast cell culture. Veterinary World 8:245-50.
11. Jarmin, S., R. Manvell, R. E. Gough, S.M. Laidlaw and M.A.Skinner. 2006. Avipoxvirus phylogenetics: identification of a PCR length polymorphism that discriminates between the two major clades. Journal of Genetic Virology 87: 2191-2201.
12. Mayr, A. and K, Danner. 1976. Oral immunization against pox. Studies on fowlpox as a model. Development in Biology Standards 33: 249-259.
13. Nagy, E., A.D, Maeda-Machang'u, P. J, Krell and J. B Derbyshire . 1990. Vaccination of 1- day- old chicks with fowlpox virus by the aerosol, drinking water, or cutaneous routes. Avian Diseases 34:677-82.
14. Nayeri Fasaei, B., O. Madadgar,A.Ghalyanchi Langeroodi and M.M.Ghafari.2014. Molecular detection and phylogenetic Analysis of Avipoxvirus strains isolated from different bird species. Iranian Journal of Veterinary Research 15:40-44.
15. Norouzian, H., G. Farjanikish., H, Hosseini. 2017. Pathological and molecular diagnosis of avian pox in backyard chickens in Khorram Abad. Veterinary Research & Biology Products 117: 2-10.
16. OIE. 2010 Office Internationals Epizooties; Paris., Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. fowl pox. Available online at: http://www.oie.int/internationalstandard-setting/terrestrial-manual/access-online/.
17. Silva, P.S., T. Batinga,T. S. Sales, E. G. Herval ,I . Ramos, P. C. Maiaand L.B. Fernandes. 2009. Fowlpox: identification and adaptation of prophylactic measures in backyard chickens in Bahia, Brazil. Brazilian Journal of Poultry Science 11: 115-119.
18. Singh, P., T. J, Kim and D, N, Tripathy. 2003. Identification and characterization of FPV strains utilizing monoclonal antibodies. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 15(1):50-4.
19. Tanizaki, E., T. Kotani and Y. Odagiri. 1986. Pathological changes of tracheal mucosa in chickens infected with fowl pox virus. Avian Diseases 31: 169-175.
20. Tripathy, D. N. and W. M. Reed. 2003. Pox. pp. 253-269. In: Diseases of Poultry, 11th Edition, Saif, Y.M., Barnes, H.J. Glisson,J.R. Fadly, A.M., Mc Dougald L.R. and Swayne, D.E., eds. Iowa State University Press, Ames, Iowa, USA.
21. Tripathy, D.N. and W. M. Reed. A Laboratory Manual for the Isolation, Identification and Characterization of Avian Pathogens. 5th edition. American Association of Avian Pathologists; Athens, GA: 2008. Pox; pp. 116–119.
22. Tulman, E.R., C. L. Afonso, Z. Lu, L. Zsak, G.F. Kutish and D.L. Rock. 2004. The genome of canarypox virus. Journal of Virology 78: 353-366.
23. Venkatasubba Rao, C., M. S. JayaramanL.1978. laboratory and Field trials with cell culture Fowl pox vaccine. Indian Veterinary Journal 55: 133-136.
24. Winter field, R.W., Hitcher, S. B. 1964. The response of chickens to vaccination whit different concentrations of pigeon’s pox and fowl pox viruses. Avian Diseases 9:237-240.
25. Winter field, R.W., W. Red.1984. Avian pox: Infection and Immunity with Quail, Psittacine, Fowl, and Pigeon Pox Viruses. Poultry Science 64:65-70.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 747
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,013


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب