اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها2,846
تعداد مقالات32,300
تعداد مشاهده مقاله41,387,067
تعداد دریافت فایل اصل مقاله18,562,163
رضی نتاج, محمد, خداکرمیان, غلام. (1394). بازیابی و بیماریزایی باکتری Xanthamonas citri subsp. malvacearum از برگ های آلوده نه ساله پنبه و بررسی خصوصیات بیوشیمیایی جدایه ها. سامانه مدیریت نشریات علمی, 3(2), 65-72. doi: 10.22092/ijcr.2016.106776
محمد رضی نتاج; غلام خداکرمیان. "بازیابی و بیماریزایی باکتری Xanthamonas citri subsp. malvacearum از برگ های آلوده نه ساله پنبه و بررسی خصوصیات بیوشیمیایی جدایه ها". سامانه مدیریت نشریات علمی, 3, 2, 1394, 65-72. doi: 10.22092/ijcr.2016.106776
رضی نتاج, محمد, خداکرمیان, غلام. (1394). 'بازیابی و بیماریزایی باکتری Xanthamonas citri subsp. malvacearum از برگ های آلوده نه ساله پنبه و بررسی خصوصیات بیوشیمیایی جدایه ها', سامانه مدیریت نشریات علمی, 3(2), pp. 65-72. doi: 10.22092/ijcr.2016.106776
رضی نتاج, محمد, خداکرمیان, غلام. بازیابی و بیماریزایی باکتری Xanthamonas citri subsp. malvacearum از برگ های آلوده نه ساله پنبه و بررسی خصوصیات بیوشیمیایی جدایه ها. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1394; 3(2): 65-72. doi: 10.22092/ijcr.2016.106776

بازیابی و بیماریزایی باکتری Xanthamonas citri subsp. malvacearum از برگ های آلوده نه ساله پنبه و بررسی خصوصیات بیوشیمیایی جدایه ها

پژوهش های پنبه ایران
مقاله 5، دوره 3، شماره 2، اسفند 1394، صفحه 65-72    اصل مقاله (1.1 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijcr.2016.106776
نویسندگان
محمد رضی نتاج* 1؛ غلام خداکرمیان2
1عضو هیات علمی موسسه تحقیقات پنبه کشور
2استاد بخش گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی دانشگاه بوعلی سینا، همدان
چکیده
بیماری بلایت باکتریایی پنبه با عامل Xanthomonas citri subsp. malvacearumاز بیماری‌های مهم و قرنطینه‌ای پنبه در ایران است که در سال 1384 در مزارع پنبه استان گلستان بروز کرد. نمونه‌هائی از برگ‌های آلوده در این سال جمع آوری و در دمای اتاق نگهداری شد. در سال 1393 قسمت‌هائی از برگ‌های آلوده پس از شستشو با آب لوله شهری، در چند قطره آب مقطر استریل قرار داده و به مدت چند ساعت در شرایط اتاق نگهداری شد. سوسپانسیون فوق در روی محیط آگار غذائی مخطط گردید. پس از 48-72 ساعت کلنی باکتری‌های زرد رنگ، مدور و 1 میلی‌متر جداسازی گردید که در آزمون‌های گرم، اکسیداز و رشد در محیط بی هوازی منفی بودند. کلیه جدایه‌ها هوازی اجباری و قادر به هیدرولیز نشاسته بودند. جدایه‌ها از گلوکز، اینولین، اورات، مالونات، لاکتات و تریپتون استفاده کرده ولی قادر به استفاده از ترهالوز، ال-رامنوز، دی-رافینوز، فوکوز، مالتوز، ال-تارتارات، دی-گالاکتورونات، استات، نیکوتینات، گلایسین، کازئین، دالسیتول، ال- ترئونین و آدونیتول نبودند. در استفاده از آرابینوز، دی-فروکتوز، دی-زایلوز، ملزیتوز، ملی بیوز، گوانین، ال- سیستئین، ال- تریپتوفان، ال- هیستیدین، بتائین، بتا-آلانین، ال-والین، دی- سوربیتول، سیترات و ال-مالئات متغیر بودند. با تزریق باکتری به اپیدرم برگ رقم گلستان پس از 3 روز علائم آبسوختگی مشاهده شد که در ادامه گسترش یافته و بلایت رگبرگ‌های اصلی و فرعی نیز مشاهده گردید. بنابراین لزوم توجه به نقش بقایای گیاهی آلوده در بروز و گسترش این بیماری از اهمیت ویژه ای برخوردار است.
کلیدواژه‌ها
پنبه؛ بلایت باکتریایی؛ بقا و Xanthomonas citri subsp. malvacearum
عنوان مقاله [English]
Relief and Pathogenicity of Xanthomonas citri subsp. malvacearum from infected cotton leaves after 9 years and investigation of biochemical characteristics of isolates
نویسندگان [English]
Mohamad Razinataj1؛ Gholam Khodakaramian2
1Cotton Research Institute of Iran
2College of Agriculture, Bu-Ali Sina University, Hamedan, Iran
چکیده [English]
Cotton bacterial blight is a important and quarantine diseases of cotton in Iran that appeared in cotton fields of Golestan province in 2005. Samples of infected leaves collected and served in room temperature. In 2014, sections from infected leaves washed with tap water, then were placed in a few drop sterile distilled water in room temperature for five hours. The suspension streaked on NA medium. After 48-72 hours isolated bacteria colonies yellow, circle and 1 mm diameter. The bacteria were negative in gram, oxidase and fermentative growth tests. All of isolates were positive oxidative growth and starch hydrolysis. The isolates used from glucose, inulin, urate, malonate, lactate and tripton but did not used from trehalose, L-rhamnose, D-raffinose, fucose, maltose, L.tartrate, D-galacturonate, acetate, nicotinate, glycine, casein, dulcitol, L-threonine, and adonitol. Isolates were variable in utilization of arabinose, D-fructose, D-xylose, melezitose, melibiose, guanine, L-cysteine, L-tryptophan, L-histidine, betaine, β-alanine, L-valine, D-sorbitol, citrate and L-maleate. In Pathogenicity test, bacterial suspension injected with sterile syringe into epidermis leaf of Golestan cotton cultivar. The water-soaked spots observed after 3 days that extended and revealed vein blight. The importance oftherole ofinfectedplant debrisin theincidence andspread of the diseaseisofparticular importance.
کلیدواژه‌ها [English]
Cotton, Bacterial blight, Survival and Xanthomonas citri subsp. malvacearum
مراجع
  1. Bradbury, J.F. 1986. Guide to Plant Pathpgenic Bateria. C.A.B. International Mycologocal Institue, Ferrylane, Kew, Surrey, England. 332 pp.
  2. Brinkerhoff, L. A. 1970. Variation in Xanthomonas malvacearum and its relation to control. Ann. Rev. Phytopathol. 8:85-110.
  3. Brinkerhoff, L. A. and Hunter, R. E. 1963. Internally infected seed as a source of inoculum for the primary cucle of bacterial blight of cotton. Phytopathlogy, 53: 1397-1401.
  4. Fahy, P.C. and Persley, G.J. 1983. Plant Bacterial Disease: A Diagnostic Guide. Academic Press. Sydney. 393 pp.
  5. Hilocks, R.J. 1992. Cotton Diseases. C.A.B. International. 415pp.
  6. Hirano, S.S. and Upper, C.D. 1983. Ecology and Epidemiology of foliar bacterial plant pathogens. Annual Review of phytopathology, 21.243-69.
  7. Holts, J.H., Krieg, N.R. Sneath, P. H.A., Stley, J.T. and Williams, S.T. 1994. Bergeys Manual of Determinative Bacteriology. 9th Edition. The Williams & Wikins Co., Baltimore, MD. USA. 1: 787 pp.
  8. Islam, Z., Khalequzzaman, K.M., Rahman, G.M.M., Tahasinul, M.I. and hossain, M. 2003. Effect of chemicals in controlling bacterial blight of cotton. Asian J. Plant Sci. 2:569-543.
  9. Jahid, I.K. and Ha, S.D. A review of microbial biofilms of produce: Future challenge to food safety. Food Science and Biotech. 21:299-316.

10. King, E.D., Ward, M.K. and Raney, D.E. 1954. Two simple media for demonstration of pyocyanin and fluorescin. J. Lab. Clinic. Medic. 44:301-307.

11. Klement, Z., Farkas, G.L. and Loverkovich, L. 1964. Hypersensitive reaction induced by phytopathogeic bacteria in the tobacco leaf. Phytopathology 54:474-477.

12. Lelliot, R.A., Billing, E. and Hayward, A.C. 1966. A determinative scheme for the fluorescent plant pathogenic pseudomonas. J. Appl. Bacteriol. 29:470-489.

13. Mehta, Y.R. 1990. Management of Xanthomonas campestrispv. undulosa through cereal seed testing. Seed Science and Technol. 18: 467-476.

14. O,Too;e, G. Kaplan, H.B. and Kolter, R. 2000. Biofilm formation as microbial development. Annu. Rev. Microbiol. 54:49-79.

15. Schaad, N.W., Jones, J.B. and Chun, W. (eds). 2001. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. 3nd edition. Aps Press. St. Minnesots, USA. 373pp.

16. Srinivasan, K.V. 1994. Cotton Diseases. CIRCOT Press. 314pp.

17. Suslow, T.V., Schroth, M.N. and Isaka, M. 1982. Application of rapid method for Gram differentiation of plant pathogenic and saprophytic bacteria without staining. Phytopathology, 72: 917-918.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 175
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 134


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب