| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 3,005 |
| تعداد مقالات | 33,631 |
| تعداد مشاهده مقاله | 44,472,549 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 29,939,743 |
پاسخ‌های بیوشیمیایی به عصاره مخمر و ساکارز در کشت سلولی سیاه‌دانه (Nigella sativa L.) | ||
| تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران | ||
| مقاله 11، دوره 34، شماره 6 - شماره پیاپی 92، بهمن و اسفند 1397، صفحه 997-1006 اصل مقاله (229.29 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijmapr.2019.116837.2225 | ||
| نویسندگان | ||
| صادق عنبرستانی1؛ علیرضا رضازاده* 2؛ آیت اله رضایی2 | ||
| 1دانش‌آموخته کارشناسی ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران | ||
| 2استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران | ||
| چکیده | ||
| سیاه‌دانه (Nigella sativa L.) گیاهی دارویی و متعلق به خانواده آلاله می‌باشد. دانه‌های این گیاه در طب سنتی برای درمان بیماری‌های آسم، التهاب، دیابت و فشار خون بالا استفاده می‌شود. کشت سلولی این گیاه به‌دلیل ترکیب‌های فعال و کاربرد در پزشکی دارای اهمیت است. در این تحقیق، به‌منظور بررسی اثر عصاره مخمر و ساکارز بر ویژگی‌های رشد سلول و صفات بیوشیمیایی کشت سلولی سیاه‌دانه آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار انجام شد. فاکتور اول سه غلظت عصاره مخمر (صفر، 0.5 و ۱ میلی‌گرم در لیتر) و فاکتور دوم سه غلظت ساکارز (30، 4۵ و60 گرم در لیتر) انتخاب گردید. پس از گذشت چهار روز از اعمال تیمارها، میزان رشد، آنتوسیانین، مقدار پروتئین محلول، فعالیت آنزیم پراکسیداز، محتوی فنول، غلظت پراکسید هیدروژن و پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی ارزیابی شد. نتایج این پژوهش نشان داد که کاربرد عصاره مخمر به تنهایی بر رشد سلول‌ها مؤثر بود و عصاره مخمر و ساکارز باعث افزایش معنی‌دار مقدار آنتوسیانین، مقدار پروتئین محلول، محتوی فنول، غلظت پراکسید هیدروژن و پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی شد. این در حالیست که فعالیت آنزیم پراکسیداز به‌صورت معنی‌داری نسبت به نمونه شاهد کاهش یافت. نتایج نشان داد احتمالاً ساکارز و عصاره مخمر از طریق تأمین منابع غذایی و القاء تنش اکسیداتیو، آثار خود را بر روی سلول‌های سیاه‌دانه نشان دادند | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| سیاه‌دانه (Nigella sativa L.)؛ الیسیتور قارچی؛ ساکارز؛ سوسپانسیون سلولی؛ زیست‌توده؛ تنش اکسیداتیو | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Biochemical responses to yeast extract and sucrose in black cumin (Nigella sativa L.) cell culture | ||
| نویسندگان [English] | ||
| S. Anbarestani1؛ A.R. Rezazadeh2؛ A. Rezaei2 | ||
| 1M.Sc. graduated of Agriculture Biotechnology, Faculty of Agriculture, Shahed University, Tehran, Iran | ||
| 2Faculty of Agriculture, Shahed University, Tehran, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Black cumin (Nigella sativa L.) is a medicinal plant belonging to the Ranunculaceae family. The seeds of Nigella sativa, also known as black seed, are used in traditional medicine as a natural remedy for several illnesses including asthma, inflammation, diabetes, and hypertension. The cell culture of this plant is important because of its active ingredients and significance in medicine. In this research, the effects of fungal elicitor (zero, 0.5 and 1 mg/L), and sucrose (30, 45 and 60 g/L) on the cell culture of black cumin was investigated as a factorial experiment in a completely randomized design with three replications. The cell growth characteristics and biochemical traits were assayed. The results showed that fungal elicitor and sucrose increased the membrane lipid peroxidation, protein concentration, phenol contents, hydrogen peroxide, and anthocyanin whereas peroxidase activity was significantly decreased compared to control. Generally, sucrose and fungal elicitor increased the growth and activity of the cell and increased the protein production by increasing oxidative stress in cells and increasing the entry of substances into the cell and stimulating metabolism. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Nigella sativa L, fungal elicitor, sucrose, suspension cultures, biomass, oxidative stress | ||
| مراجع | ||
|
- Botnick, I., Xue, W., Bar, E., Ibdah, M., Schwartz, A., Joel, D.M., Lev, E., Fait, A. and Lewinsohn, E., 2012. Distribution of primary and specialized metabolites in Nigella sativa seeds, a spice with vast traditional and historical uses. Molecules, 17(9): 10159-10177. - Bradford, M., 1976. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248-254. - Chen, H., Chenaa, F., Chiub, F.C.K. and Lob, C.M.Y., 2001. The effect of yeast elicitor on the growth and secondary metabolism of hairy root cultures of Salvia miltiorrhiza. Enzyme and Microbial Technology, 28(1): 100-105. - De Vos, C.H.R., Schat, H., De Waal, M.A.D., Vooijs, R. and Ernst, W.H.O., 1991. Increased resistance to copper-induced damger of the root plasma membrance in copper tolerant Silene cucubalus. Physiology Plant, 82: 523-528. - Dornenborg, H. and Knorr, D., 1997. Evaluation of elicitor- and high-pressure-induced enzymatic browning utilizing potato (Solanum tuberosum) suspension cultures as a model system for plant tissues. Agriculture Food Chemistry, 45: 4173-4177. - Góraj-Koniarska, J. and Saniewski, M., 2015. The effect of sugars in relation to methyl jasmonate on anthocyanin formation in the roots of Kalanchoe blossfeldiana (Poelln.). Acta Agrobotanica, 68(2): 173-178 - Hossein Zadeh, M., Kiarostemi, K.H., Elkhanizadeh, M. and Sabora, O., 2009. Investigation on allelopathic effects of wild barly on protei, carbohydrate contents and some wheat enzyme activities. Iranian Journal of Biology, 22: 392-406. - Karuppanapandian, T., Moon, J., Kim, C. and Manoharan, K., 2011. Reactive oxygen species in plants: their generation, signal transduction, and scavenging mechanisms. Australian Journal of Crop Science, 5(6): 709-725. - Loc, N.H., Anh, N.H.H.T., Khuyen, L.T.M. and An, T.N.T., 2014. Effects of yeast extract and methyl jasmonate on the enhancement of solasodine biosynthesis in cell cultures of Solanum hainanense Hance. Bioscience Biotechnology, 3(1): 1-6. - Merzlyak, M.N., Solovchenko, A.E. and Gitelson, A.A., 2003. Reflectance spectral features and non-destructive estimation of chlorophyll, carotenoid and anthocyanin content in apple fruit. Postharvest Biology and Technology, 27(2): 197-211. - Mossera, M., Kapela, R., Aymesa, A., Bonannob, L.M., Olmosa, E., Chevalota, I., Marca, I. and Marc, A., 2012. Chromatographic fractionation of yeast extract: A strategy to identify physicochemical properties of compounds promoting CHO cell culture. Process Biochemistry, 47(7): 1178-1185. - Namdeo, A.G., 2007. Plant cell elicitation for production of secondary metabolites: a review. Pharmacognosy Reviews, 1: 69-79. - Pollock, C., Farrar, J., Tomos, D., Gallagher, J., Lu, C. and Koroleva, O., 2003. Balancing supply and demand: the spatial regulation of carbon metabolism in grass and cereal leaves. Journal of Experimental Botany, 54: 489-494. - Rahimi Ashtiani, S., Hasanloo, T. and Bihamta, M.R., 2009. Using yeast extract as an approach to increase flavonolignans content in cell suspension culture of milk thistle plant via elicitation mechanism. Journal of Medicinal Plants, 4(32): 108-119. - Savitha, B.C., Thimmaraju, R., Bhagyalakshmi, N. and Ravishankar, G.A., 2006. Different biotic and abiotic elicitors influence betalain production in hairy root cultures of Beta vulgaris in shake-flask and bioreactor. Process Biochemistry, 41(1): 50-60. - Seyedtabatabaei, E. and Omidi, M., 2010. Plant Cell and Tissue Culture. Tehran University Press, 392p. - Tognetti, J.A., Pontis, G.H. and Martínez-Noël, M.A., 2013. Sucrose signaling in plants: A world yet to be explored. Plant Signaling & Behavior, 8(3): e23316-1-10. - Wind, J., Smeekens, S. and Hanson, J., 2010. Sucrose: metabolite and signaling molecule. Phytochemistry, 71(14-15): 1610-1614. - Yuan, Y., Li, Ch., Hu, Z. and Wu, J., 2002. A double oxidative burst for taxol production in suspension cultures of Taxus chinensis var. mairei induced by oligosaccharide from Fusarium oxysprum. Enzyme and Microbial Technology, 30(6): 774-778. - Yue, W., Ming, Q.L., Lin, B., Rahman, K., Zheng, C.J., Han, T. and Qin, L.P., 2016. Medicinal plant cell suspension cultures: pharmaceutical applications and high-yielding strategies for the desired secondary metabolites. Critical Reviews in Biotechnology, 36(2): 215-232. - Zarei, A., Zohrabi, S. and Boomeh, F., 2017. Evaluation of different growth stages of Nigella sativa L. and assessment of crop coefficient (Kc). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 33(4): 597-607. - Zhao, J., Davis, L.C. and Verpoorte, R., 2005. Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology Advances, 23: 283-333. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 575 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 557 |
||