| تعداد نشریات | 285 |
| تعداد نشریات سازمان | 83 |
| تعداد شماره‌ها | 3,086 |
| تعداد مقالات | 34,441 |
| تعداد مشاهده مقاله | 48,904,774 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 79,345,709 |
تأثیر گونه و تنظیم‌کننده‌های رشد گیا‌هی بر شاخهزایی و ریشهزایی سه گونه زالزالک (Crataegus spp) | ||
| تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران | ||
| مقاله 13، دوره 25، شماره 2 - شماره پیاپی 50، مهر 1396، صفحه 337-347 اصل مقاله (291.18 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله علمی - پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijrfpbgr.2017.113324 | ||
| نویسندگان | ||
| نوربخش تیموری1؛ دانیال کهریزی* 2؛ وحید عبدوسی3؛ عبدالحمید پاپزن4 | ||
| 1گروه علوم باغبانی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران | ||
| 2دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه رازی، کرمانشاه | ||
| 3استادیار، گروه علوم باغبانی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران | ||
| 4دانشیار، گروه ترویج و آموزش کشاورزی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه | ||
| چکیده | ||
| زالزالک (Crataegusspp) یکی از جنس‌های جنگلی مهم در ایران است. سازگاری بالایی به خشکی و سرما داشته و بهعنوان پایه برای به، گلابی و سیب کارایی دارد. این تحقیق بهمنظور ارزیابی شاخهزایی و ریشهزایی سه گونه زالزالک بهنامهای C. aronia، C. pseudohetrophylla و C. meyeriانجام شد. برای این منظور از غلظتهای مختلف تنظیم‌کننده‌های رشد و ریزنمونه تک‌گره حاوی جوانه جانبی استفاده شد. ریزنمونه در غلظتهای مختلفBAP بهعلاوه NAA در محیط MS کشت شد. میانگینها پس از 6 هفته نشان داد که حداکثر تعداد شاخساره در غلظت 1 میلیگرم در لیتر NAAبعلاوه 4 میلیگرم در لیتر BAP (33/4 شاخه)، بیشترین درصد ریزنمونه رشدکرده (67/89 درصد) در گونه C. aronia و بیشترین طول شاخه (67/22 میلیمتر) در گونهC. meyeri و 1 میلیگرم در لیتر NAA و 1 میلیگرم در لیتر BAP بهدست آمد. برای ریشهزایی از محیط کشت MS،MS 2/1 و پشم سنگ با ریزنمونههای پرآوری شده حاصل از پاجوش و شاخسارههای پرآوری شده در شرایط درون شیشهای استفاده شد. ریزنمونه‌ها در 16 تیمار مختلف در محیط کشتMS،MS 2/1 و پشم سنگ کشت شد. در هیچ‌یک از گونهها، تیمارها و محیطهای کشت ریشهزایی مشاهده نشد. بیشترین طول شاخه در گونه C. meyeri و بیشترین تعداد شاخه در گونهC. aronia وجود داشت و هیچ‌یک از تیمارها، گونهها و محیطهای کشت ریشهزایی مناسبی نداشتند. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| زالزالک؛ پرآوری؛ ریشهزایی؛ تنظیم‌کننده رشدگیاهی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of species and plant growth regulators on shoots and rooting of three species of hawthorn | ||
| نویسندگان [English] | ||
| N. Teimori1؛ D. Kahrizi2؛ V. Abdossi3؛ A. Papzan4 | ||
| 1- Department of Horticulture, Science and Research Unit, Islamic Azad University, Tehran, I.R. Iran | ||
| 2Associate Professor, Departmnt of Agronomy and Plant Breeding, Razi University, Kermanshah, I.R. Iran | ||
| 3Assistant Professor, Department of Horticulture, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, I.R. Iran | ||
| 4Associate Professor, Agricultural Extension and Education, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermanshah, I.R. Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Hawthorn (Crataegus spp) is one of the important forest genera in Iran. It is high compatibel to cold and drought and usefull as a rootstock for quince, pear and apple. This research was carried out in order to assess shoots and rooting of three species of hawthorn (C. aronia, C. pseudohetrophylla, C. meyeri). For shoot production, different concentrations of plant growth regulators and single-node were used. The explants were cultured on different concenterations of BAP and NAA on MS medium. On average after 6 weeks maximum number of shoots in concenteration of 1mg/l NAA plus 4 mg/l BAP (4.33 branch) was observed. The highest percentage of explants (89.67 %) was observed on C. aronia andmaximum shoot length (22.67 mm) was observed on C. meyeri using 1 mg/l NAA and 1 mg/l BAP. For rooting stage, we used MS, 1/2MS and rock wool with proliferated explants derived from suker and in vitro proliferated shoots. The explants were cultured on 16 different media treatments of MS, 1/2MS and rock wool medium. Root was not formed in none of the species, treatments and media. Maximum shoot length (22.67 mm) was observed on C. meyeri, and maximum number of branches was observed on C. aronia. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Hawthorn, proliferation, rooting, plant growth regulators | ||
| مراجع | ||
|
-Ahmadloo, F., TabariKoochaksaraei, M., Azadi, P., Hamidi, A. and Beiramizadeh, E., 2014. Micropropagation of Crataeguspseudo heterophylla Pojark. via in vitro culture. Journal of Wood and Forest Science and Technology, 21:1-23 (In persian). -AL-Aubaidi. H.K.M., 2011. Rooting of Crataegus Japan L. In vitro using IBA. Journal of Biotechnology Recearch Center, 5(3): 5-8. -Al-Manasrah, W.S., 2012. In vitro propagation of Crataegus aronia L. and secondary metabolites detection. M.Sc. Thesis. Palestine Polytechnic University. Deanship of Higher Studies and Scientific Research. Master Program of Biotechnology. Sydney, Australia. 99 p. -Arjmandi, A., Nazeri, V., Ejtehadi, H. and Joharchi, M.R., 2009. Review of the genus Crataegus in the North East and East of Iran. Rostaniha, 10: 1-12. -Baraldi, R., 1988. In vitro shoot development of Prunus GF-655-2: Interaction between light and benzyl adenine. Physiologia Plantarum, 74: 440-443. -Biswas, M.K., Islam, R., Hossain, M., 2008. Micropropagation and field evaluation of strawberry in Bangladesh. Journal of Agriculture Technology, 4(1): 167-182. -Bujarska-Borkowska, B., 2002. Breaking of seed dormancy, germination and seedling emergence of the common hawthorn (Crataegus monogyna Jacq). Dendrobiology, 47: 61-70. -Caboni, E., Meneghini, M., Tonelli, M., 2010. Improved micropropagation of azarole (Crataegus azarolus L.). Propagation of Ornamental Plants, 10(1): 9-13. -Cassells, A.C., 1979. The effect of 2,3,5-tri-iodobenzoic acid on caulogenesis in callus cultures of tomato and pelargonium. Physiology Plant, 46: 156-164. -Donmez, A.A., 2004. The genus Crataegus L. (Rosaceae) with special reference to hybridization and biodiversity in Turkey Journal of Botany, 28: 29-37. -Evers, P.W., Donkers, J., Prat A, and Vermeer, E., 1988. Micropropagation of forest trees through tissue culture. Centre for agricultural publishing and documentation (pudoc), Wageningen. In: In vitro culture of trees, 1992, J. M. Bonga & Aderkas P. pp: 98. -Freire, I. C. G., Oelho, C. P. S. C., and Barros, M. T. F., 2002. Improved culture media for the in vitro establishment of pear from nodal cuttings. Acta Horticulturae, 569: 457- 461. -Gokbunar, L., 2007. Invitro micropropagation of howthorn (Crataegu sp). M. Sc. Of Horticulture. Kahramanmaras sutcu Imam University Institute of Natural and Applied Science, Turkey. 42p. -Hongyan, D., Zhihong, Z., Xiuwu, G., 2007. Adventitious bud regeneration from leaf and cotyledon explants of Chinese hawthorn (Crataegus pinnatifida bge. var. major N.E.Br.). In Vitro Cell. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 43: 2–8. -Iapichino, G., Airò M., 2009. Multiplication of Crataegus monogyna by invitro culture of nodal segments. Acta Horticulturae, 812: 135-140. -ISTA (International seed testing Association)., 2008. Annexe to chapter seed health teting methods. 199p. -Kadota, M., Niimi, Y., 2003. Effects of cytokinin types and their concentration on shoot proliferation and hyperhydricity in Invitro pear cultivar shoots. Plant Cell, Tissue Organ Culture, 72: 261-265. -Khodaee Chegini, F., Abdollahi, H., Ershadi, A., Asna Ashari, M., 2012. Determination of micro-propagation protocol for OH × F333 and OH × F69 pear clonal rootstocks. Seed and Plant Production Journal, 2-27(3): 297-312. (In Farsi). -Maharic, N., Elgengaihi, S., Taha, H., 2009. Invitro propagation of the endangered Sinai hawthorn Crataegus sinaica Boiss. International Journal of Academic Research, 1(1): 24-29. -Mehmet, N., Leyla G., Nevazat, S., Murat, A., Merve, D., Zahide, S., 2012. Micropropagation of mature Crataegus aronia L., a medicinal and ornamental plant with rootstock potential for pome fruit. Plant Growth Regulators, l67: 57-63. -Muna, A., Ahmad, A., Mahmoud, K., Abdul-Rahman, K., 1999. In vitro propagation of a semi-dwarfing cherry rootstock. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 59: 203-208. -Murashige, T., Skoog, F., 1962. A revised medium for rapid growth and bio assay with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15: 473-497. -Nas, M.N, Gokbunar, L., Sevgin, N., Aydemir, M., Dagli, M., Susluoglu, Z., 2012. Micropropagation of mature Crataegus aronia L., a medicinal and ornamental plant with rootstock potential for pome fruit. Journal of Plant Growth Regulators, 67(1): 57-63. -Nas, M.N., Read, P.E., Miller, V., Rutter, P.A., 2003. In vitro rejuvenation of woody species is temporary. Acta Horticulture, 625: 211–215. -Passey, A.J., Barrett, K.J., James, D.J., 2003. Adventitious shoot regeneration from seven commercial strawberry cultivars (Fragaria×ananasa Duch.) using a range of explants types. Plant Cell Reports, 21: 397-401. -Thakur R. Raw, P. S., 1998. In vitro plant regeneration in Melia azedarach. L. Plant Cell Reports, 18:127-131. -Theologies, A., 1986. Rapid gene regulation by anxin. Annual Reviews, Plant Physiology, 37: 407– 488. -Walter, H., Eny, I.S.F., 1998. New-formation of flower buds and other morphogenetic responses in tissue cultures of Melia azedarach. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 64: 63-67. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 920 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 597 |
||