بررسی اثر غلظت‌های مختلف تنظیم‎کننده رشد گیاهی و نوع ریزنمونه بر میزان القای کالوس، رویان‌زایی و باززایی شاخساره مرزنجوش بخارایی (Origanum vulgare ssp. gracile)

حسینی, بهمن; بی‎قامت, افسانه

doi:10.22092/ijrfpbgr.2016.109416

فهرست نشریات

اعطای مجوز انتشار 3 مجله ترویجی در شورای انتشارات سازمان

به روز رسانی بخش استخراج به پایگاه‌های علمی (08-04-1401)

به روز رسانی ظاهری سامانه (08-04-1401)

ارتقاء سامانه مدیریت نشریات

وبینار آموزشی آیین نامه نشریات علمی و شیوه نامه ارزیابی و رتبه بندی نشریات علمی در تاریخ 25 شهریور ماه 1398

برگزاری دوره آموزشی ویراستاری متون علمی از طریق وب کنفرانس در تاریخ 1398/2/11

راه اندازی سامانه ارزیابی نشریات

قابل توجه سردبیران و مدیران داخلی نشریات (ساماندهی صفحه اول نشریات در سامانه)

مجوز انتشار دو نشریه توسط شورای انتشارات سازمان در مردادماه 1397

ارزیابی سال 1397

تعداد نشریات	283
تعداد نشریات سازمان	81
تعداد شماره‌ها	2,727
تعداد مقالات	31,053
تعداد مشاهده مقاله	28,154,780
تعداد دریافت فایل اصل مقاله	16,251,836

	بررسی اثر غلظت‌های مختلف تنظیم‎کننده رشد گیاهی و نوع ریزنمونه بر میزان القای کالوس، رویان‌زایی و باززایی شاخساره مرزنجوش بخارایی (Origanum vulgare ssp. gracile)
تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران
مقاله 10، دوره 24، شماره 2 - شماره پیاپی 48، آذر 1395، صفحه 264-276 اصل مقاله (378.56 K)
نوع مقاله: مقاله علمی - پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijrfpbgr.2016.109416
نویسندگان
بهمن حسینی^* ¹؛ افسانه بی‎قامت²
¹دانشیار، علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه
²کارشناس ارشد گیاهان دارویی، علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه
چکیده
مرزنجوش بخارایی (Origanum vulgar ssp. gracile) از گیاهان دارویی متعلق به خانواده نعناعیان (Lamiaceae) میباشد. ترکیب غالب اسانس آن را کارواکرول تشکیل میدهد. در این تحقیق تأثیر غلظتهای مختلف 2,4-D در ترکیب با BAP بر روی کالوسزایی ریزنمونههای مختلف (کوتیلدون، هیپوکوتیل، گره، نوک شاخه و برگ) گیاه مرزنجوش بخارایی بررسی شد. اثر متقابل نوع محیط کشت در نوع ریزنمونه در سطح احتمال 1 درصد معنیدار شد. در ریزنمونه برگ حداکثر القای کالوس (100 درصد) در تیمارهای 1 و 3 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D و در ریزنمونه گره در تیمار 3 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D حداکثر درصد القای کالوس (3/93 درصد) مشاهده شد. تیمار 1/0 میلی‌گرم در لیتر BAP کمترین میزان القای کالوس (صفر درصد) را در ریزنمونه برگ نشان داد. بیشترین درصد تولید کالوس رویانزا در محیط کشت MS حاوی 1 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D در ترکیب با 1/0 میلی‌گرم در لیتر BAP در ریزنمونه نوک شاخه به‎دست آمد و کمترین میزان در محیط کشت MS بدون تنظیم‎کننده رشد گیاهی و محیط حاوی 1/0 میلی‌گرم در لیتر BAP در همه ریزنمونهها و در محیط حاوی 5 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D در ریزنمونه هیپوکوتیل مشاهده شد. با افزایش غلظت تنظیم‎کننده رشد گیاهی 2,4-D رویان‎زایی کاهش یافت و در بین ریزنمونهها نوک شاخه و گره بالاترین درصد رویانزایی را داشتند. در آزمایش بررسی اثر BAP در شاخه‎زایی ریزنمونهها، بیشترین میزان شاخهزایی (100 درصد) در ریزنمونه گره و نوک شاخه در هر دو تیمار صفر و 1/0 میلی‎گرم در لیتر BAP به‎دست آمد.
کلیدواژه‌ها
اسانس؛ بنزیل‌آمینو پورین؛ توفوردی؛ وزن تر
عنوان مقاله [English]
Effects of different concentrations of growth regulators and explants type on callus induction, embryogenesis and shoot regeneration of Origanum vulgare ssp. Gracile
نویسندگان [English]
B. Hosseini¹؛ A. Bighamat²
¹Associate Prof., Department of Horticulture, Faculty of Agriculture, Urmia University, Urmia, I.R. Iran
²M.Sc., Department of Horticulture, Faculty of Agriculture, Urmia University, Urmia, I.R. Iran
چکیده [English]
Origanum vulgar ssp. gracile is one of medicinal plants belonging to Lamiaceae family. Carvacrol was detected as a dominant component of essential oils of the species. Effects of different concentrations of 2,4-Dichlorophenoxy Acetic Acid (2,4-D) in combination with benzyl adenine (BAP) were investigated on callus induction of various explants (Cotyledon, Hypocotyl, Node, Shoot Tip and leaf) of the species.Interaction between culture media and explant types was significant at 1% Level of probability. The highest percentage of callus induction (100%) was obtained on MS medium supplemented with 1 and 3 mg l⁻¹ 2,4-D on node explants. Maximum callus induction (93.3%) was observed on MS medium supplemented with 3 mg l⁻¹ 2,4-D. No callus induction (0%) was observed on control and MS medium supplemented with 0.1 mg l⁻¹BA on leaf explants. Higher percentage of embryogenic callus production was obtained on MS medium supplemented with 1 mg l⁻¹2,4-D in combination with 0.1 mg l⁻¹ BAP on shoot tip explants. Percentage of embryogenic induction was the lowest on hormone free MS medium and media containing 0.1 mg l⁻¹ BAP in all explants and MS media supplemented with 5 mg l⁻¹2,4-D on hypocotyl explant. By increasing 2,4-D concentration, embryogenesis was decreased and maximum embryogenesis percentage was obtained by shoot tip and node explants. Effects of BAP on shoot regeneration from explants, the highest shoot regeneration (100%) on nodes and shoot tip explants on hormone free media and MS media fortified with 1 mg l⁻¹ BAP were obtained.
کلیدواژه‌ها [English]
BAP, essential oil, fresh weight, 2, 4-D

مراجع
-Abd Elaleem, K.G., Modawi, R.S. and Khalafalla, M.M., 2009. Effect of plant growth regulators on callus induction and plant regeneration in tuber segment culture of potato (Solanum tuberosum L.) cultivar Diamant. African Journal of Biotechnology, 8: 2529-2534. -Abdi, G. and Hedayat, M., 2009. Callus induction and plant regeneration in Tanacetum cinerariaefolium (Trevir.) Schultz-Bip: an important medicinal plant. Horticulture, Environment and Biotechnology, 50: 347- 351. -Abdin, M.Z. and Kamaluddin, A., 2006. Improwing quality of medicinal herbs through physio- chemical and molecular approaches, in traditional systems of medicine. Narosa India Publishing, House Pvt. Ltd, New Dehli. -Afshari, E., Ranjbar, G.A., Kazemitabar, S.K., Riasat, M. and Kazemi Poshtmasari, H., 2011. Callus induction, Somatic embryogenesis and plant regeneration in fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 27: 147-160. -Ahmad, N., Fazal, H. and Zamir, R., 2011. Callogenesis and shoot organogenesis from flowers of Stevia rebaudiana (Bert.). Sugar Tech., 13: 174-177. -Ahmadi, J., Mohammadi, R., Garousi, Gh. and Hosseini, R., 2013. Optimization of Callus Induction and Cell Suspension in Catharanthus roseus. Agricultural Biotechnology, 4: 1-18. -Akbas, F., Isikalan, C. and Namli, S. 2009. Callus induction and plant regeneration from different explants of Actinidia deliciosa. Applied Biochemistry and Biotechnology, 158: 470-475. -Arafeh, M.R., Shibli, A., Al-Mahmoud, M. and Shatanwi, M.A., 2006. Callusing cell suspension culture and secondary metabolites production in Persian oregano(Origanum vulgare L.) and Arabian oregano (Origanum. syriacum L.), Jordan Journal of Agricultural Sciences, 2: 274-284. -Basalma, D., Uranbey, S., Mirici, S. and Kolsarici, O., 2008. TDZ×IBA induced shoot regeneration from cotyledonary leaves and in vitro multiplication in safflower (Carthamus tinctorius L.). African Journal of Biotechnology, 7: 960-966. -Bourgaud, F., Gravot, A. and Goniter, E., 2002. Production of plant secondary metabolites. Plant Science, 161: 839-851. -Centeno, M.l., Rodriguez, A., Feito, I. and Fernandez, B., 1996. Relationship between endogenous auxin and cytokinin levels and morphogenic respnses in Actinidia deliciosa tissue cultures. Plant Cell Reports. 16:58-62. -Datta, M.M. and Jha, S., 2004. Embryo culture of Taxus wallichiana (Zucc.). Journal of Plant Biotechnology, 6: 213-219. -Dennis, T.T. and Maseena, E.A., 2006. Callus induction and plant regeneration in Cardiospermum kalicacabum L. an important medicinal plant. Scientia Horticulturae, 108: 332-336. -Dessouky, M., Taha, H. and El-Bahr, M., 2001. Enhancement of alkaloids production in suspension cultures of Datura stramonium L. and Datura metel L. Biotechnology, 4: 23-30. -El-Gengaihi, S., Taha, H.S. and Kamel, A.M., 2006. In vivo and in vitro comparative studies of Origanum species. Journal of Food, Agriculture and Environment, 4: 127-134. -Garcia, R., Pacheco, G., Falcao, E. and Borges, G., 2011. Influence of type of explant, plant regulators, salt composition of basal medium and light on callogenesis in Passiflora subersoa L. (Passifloraceae). Plant Cell Tissue and Organ Culture, 106: 47-45. -Hsia, C. and Korban, S.S., 1996. Organogenesis and somatic embryogenesis in callus cultures of Rosa hybrida and Rosa chinensis minima. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 44: 1–6. -Hasandokht, M. R. and Ebrahimi, R., 2006. Principle of Plant Tissue Culture. Marze Danesh Publication. Tehran, Iran, 328 p. -Ietswaart, J.H., 1982. Origanum. In: Rechinger, K. H.,(Eds). Flora Iranica pp: 527-532 Amesterdam, No. 150. -Ikeuchi, M., Sugimoto, K. and Iwase, A., 2013. Plant callus: mechanisms of induction and repression. The Plant Cell, 25: 3159-3173. -Ishii, Y., Takamura, T., Goi, M. and Tanaka, M., 1998. Callus induction and somatic embryogenesis of Phalaenopsis. Plant Cell Reports, 17: 446-450. -Islam, M.M., Ahmed, M. and Mahaldar, D., 2005. In vitro callus induction and plant regeneration in seed explants of rice (Oryza sativa L.). Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, 1: 72–75. -Jahangir, A., Iftekhar, A., Akhtar, Sh.,Mizanur, R.M., Anisuzzaman, M. and Mohammad Firoz, A., 2010. Micropropagation and antimicrobial activity of Operculina turpethum' (Syn. 'Ipomoea turpethum'), an endangered medicinal plant. Plant Biology and Omics, 3: (2): 40-46. -Jayanthi, M. and Mandel, P.K., 2001. Plant regeneration through somatic embryogenesis and RAPD analysis of regenerated plants in Tylopbora indica (Burm. F. Merrill). In vitro Cellular and Developmental Biology- Plant, 37: 576-580. -Jayasree, T., Pavan, U., Ramesh, M. and Rao, A.V., 2001. Somatic embryogenesis from leaf culture of potato. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 64: 13-17. -Khawar, K.M., Sarýhan, E., Sevimay, C. and Cocu, S., 2005. Adventitious shoot regeneration and micropropagation of Plantago lanceolata L. Period Biology, 107: 113-116. -Khorrami Raad, M., Bohluli Zanjani, S., Ramezani Sayyad, A., Maghsudi, M. and Kaviani, B., 2012. Effect of cultivar, type and age of explants, light conditions and plant growth regulators on callus formation of Anthurium. American-Eurasian Journal of Agriculture. & Environmental. Sciences, 12: 706-712. -Khosravi, S., Azghandi, A.V., Hadad, R. and Mojtahedi, N., 2007. In vitro micrpropagation of Lilium longiflorum. Journal of Agricultural Research: Seed and Plant, 23: 159- 168. -LaGrow, B., 2007. PDR for Herbal Medicine. 4th edition, Thomson Healthcare Hardcover, USA, 990 pp -Mahmood, I., Razzaq, A., Khan, Z.U.D, Hafez, I.A. and Kaleem, S., 2012. Evaluation of tissue culture responses of promising wheat (Triticum aestivum L.) cultivars and development of efficient regeneration system, Pakistan Journal of Botany, 44: 277-284. -Mandal, A.K.H. and Gupta, S.D., 2001. Direct shoot organogenesis and plant regeneration in safflower. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 37: 50-54. -Mohajer, S., Taha, R., Khorasani, A. and Syafawati, J.Y., 2012. Induction of different types of callus and somatic emberyogenesis in various explants of sainfoin (Onobrychis sativa). Australian Journal of Crop Science, 6(8): 1305-1313. -Neibaur, I., Gallo, M. and Altpeter, F. 2008. The effect of auxin type and cytokinin concentration on callus induction and plant regeneration frequency from immature inflorescence segments of seashore paspalum (Paspalum vaginatum. Swartz). In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 44: 480-486. -Nicolaeva, T.N., Zagoskina, N.V. and Zaprometov, M.N. 2009. Production of phenolic compounds in callus cultures of tea plant under the effect of 2,4-D and BA. Russian Journal of Plant Physiology, 56: 45-49. -Padulois, S., 1997. Oregano. Proceeding of the IPGRI International Workshop on Oregano, Rome, Italy, pp: 84 - 86. -Pandey, P., Mehta, R. and Upadhyay, R., 2013. Effect of explants type and different plant growth regulators on callus induction and plantlet regeneration in Psoraleacorylifolia L. International Journal of Research in Pharmaceutical and Biomedical Science, 4: 914-918. -Park,. H.J., Lee, H.R., Pyee, J. and Cha, H.C., 2001. Regeneration of grape (Vitis labruscana cv. Kyoho) by shoot tip culture. Journal of Plant Biology, 44: 185-192. -Pola, S., Mani, S. and Ramana, T., 2009. Long-term maintenance of callus culture from immature embryo of sorghum bicolor, World Journal of Agricultural Sciences, 5: 415-421. -Rostami, R., Abrishamchi, P. and Lahooti, M., 2011. Callus induction and plant regeneration from meristem culture of potato (Solanum tuberosum L.). Journal of Science (Kharazmi University), 10: 1011-1032 -Rostampur, S., Hashemi, S. and Dehestani, A., 2010. In vitro regeneration of Persian poppy (Papaver bracteatum). Biologia, 65: 647-652. -Rout, G., Mohapatra, A. and Mohan, S., 2006. Tissue culture of ornamental pot plant: A critical review on present scenario and future prospects. Biotechnology Advance, 24: 531-560. -Roy, A., Ghosh, S., Chaudhuri, M. and Saha, P.K., 2008. Effect of different plant hormones on callus induction in Gymnema sylvestris R. Br. (Asclepiadaceae). African Journal of Biotechnology, 7: 2209-2211. -Sarkheil1, P., Omidi, M., Peyghambari, S.A. and Davazdahemami, S. 2009. The effects of plant growth regulators and explants on callogenesis, regeneration and suspension culture in Foeniculum vulgare Mill. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 25: 364-375. -Singh, B.D., 2005. Plant tissue culture. Biotechnology-Fundamental and applications. New Delhi. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 14: 332-425. -Sobhakumari, V.P. and Lalithakumari, D., 2003. Direct plant regeneration from shoot tip cultures of Capsicum annuum L. cv. PLR-1. Phytomorphology, 53: 235-242. -Sujatha, M. and Dinesh Kumar, V., 2007. In vitro bud regeneration of Carthamus tinctorius and wild Carthamus species from leaf explants and axillary bud. Biologia Plantarum, 51: 782-786. -Te-chato, S., Susanon, T. and Sontikun, Y., 2004. Cultivar explant type and culture medium influencing embryogenesis and organogenegenesisin Anthurium. Organic Biochem., 28: 717-722. -Wang, Y.Z., Ge, K.L., Zou, G.Z., Yang, J.S. and Ye, M.M., 1985. Callus induction and plantlet regeneration in grapevines. Acta Botanica Sinica, 27: 661-664. -Yang. J., Gong, Z.C. and Tan, X., 2008. Induction of callus and extraction of alkaloid from Yimu Cao (Leonurus hetrophylus Sw.) culture. African Journal of Biotechnology, 7: 1157-1162. -Zargari, A., (1987). Iranian Medicinal Plants, Tehran University Press, Tehran.
آمار تعداد مشاهده مقاله: 553 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 683

سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب

پیوندهای مفید

اخبار و اعلانات

آمار

بررسی اثر غلظت‌های مختلف تنظیم‎کننده رشد گیاهی و نوع ریزنمونه بر میزان القای کالوس، رویان‌زایی و باززایی شاخساره مرزنجوش بخارایی (Origanum vulgare ssp. gracile)