| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 2,846 |
| تعداد مقالات | 32,300 |
| تعداد مشاهده مقاله | 41,387,124 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 18,562,183 |
اثر تنظیم‌کننده‌های رشد و زغال فعال بر تکثیر درون شیشه‌ای گیاه آلوئه‌ورا (Aloe vera L.) | ||
| تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران | ||
| مقاله 9، دوره 32، شماره 2 - شماره پیاپی 76، خرداد 1395، صفحه 281-289 اصل مقاله (269.86 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijmapr.2016.106562 | ||
| نویسندگان | ||
| سام شمسیان* 1؛ منصور امیدی2؛ سپیده ترابی3 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران | ||
| 2استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
| 3استادیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران | ||
| چکیده | ||
| صبر‌زرد (Aloe vera L.) یکی از گیاهان با ارزش در صنایع دارویی، آرایشی، بهداشتی و غذایی محسوب می‌شود. باتوجه به نیاز روزافزون به این گیاه تحقیقات گسترده‌ای بر کشت درون شیشه‌ای آن انجام شده است. تکثیر درون شیشه‌ای این گیاه روشی مناسب و کار‌آمد برای تکثیر انبوه و همچنین استفاده از متابولیت‌های ثانویه می‌باشد. در این تحقیق بهترین روش سترون‌سازی ریز‌نمونه‌های برگرفته از گیاهچه‌های آلوئه‌ورا و اثر تنظیم‌کننده‌های رشد BAP، NAA و زغال فعال مورد بررسی قرار گرفت. این آزمایش بر پایه طرح کاملاً تصادفی (CRD)، 3 تکرار و 5 تیمار طراحی شد. BAP با غلظت‌های 5 و 4 میلی‌گرم در لیتر وNAA 2/0 میلی‌گرم در لیتر و زغال فعال 2 گرم در لیتر در محیط کشت MS برای القا جوانه‌های جانبی از گیاهچه مورد مطالعه قرار گرفت. بهترین پروتکل، قارچ‌کش کاربندازیم 1% (20 دقیقه)، الکل 70% (30 ثانیه)، هیپوکلرید سدیم 5/2% (20 دقیقه)، کلرید جیوه 1/0% (10 دقیقه) بود و همچنین محیط کشت MS به همراه 5 میلی‌گرم در لیتر BAP و 2 گرم در لیتر زغال فعال بهترین محیط برای القاء جوانه جانبی شناخته شد. جوانه‌های بدست‌آمده در محیط کشت MS حاوی 2/0 میلی‌گرم در لیترNAA ریشه‌دار شدند و 85% پاجوش‌های بدست‌آمده پس از طی مرحله سازگاری در گلخانه زنده ماندند. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| آلوئه‌ورا (Aloe vera L.)؛ تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی؛ جوانه جانبی؛ ریزازدیادی؛ زغال فعال | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of growth regulators and activated charcoal on in vitro propagation of Aloe vera L. | ||
| نویسندگان [English] | ||
| S. Shamsian1؛ M. Omidi2؛ S. Torabi3 | ||
| 1MSc. Student, Department of Plant Breeding, Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran, Iran | ||
| 2College of Agriculture and Natural Resources of Tehran University, Karaj, Iran | ||
| 3Assistant Professor, Department of Plant Breeding and Biotechnology, Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Aloe (Aloe vera L.) is one of the most valuable plants in the pharmaceutical, cosmetic, food and health industries. Due to the growing need for this plant, extensive research has been done on in vitro culture. In vitro propagation of this plant is a convenient and efficient way for the massive proliferation and the use of secondary metabolites. In this study, the best method of sterilization for the explants derived from Aloe vera seedlings and the effects of growth regulators BAP, NAA, and activated charcoal were investigated. The experiment was based on a completely randomized (CRD) design with 3 replications and 5 treatments. BAP at concentrations of 5 and 4 mg per liter, NAA at 0.2 mg per liter, and activated charcoal at 2 grams per liter were used in the MS-medium to induce the lateral buds of seedlings. Fungicide carbendazim 1% (20 min.), alcohol 70% (30 seconds), sodium hypochlorite 2.5% (20 min.), mercuric chloride 0.1% (10 minutes) was identified as the best protocol. In addition, MS-medium with 5 mg/L BAP and 2 grams per liter of activated charcoal was known to be the best environment to induce the lateral buds. The buds obtained in the MS-medium containing 2.0 ppm NAA were rooted and 85% of cuttings survived in the greenhouse. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Aloe vera L, plant growth regulators, lateral buds, micro propagation, activated charcoal | ||
| مراجع | ||
|
- Abdollahzadeh, N., Daneshvar, M.H. and Moallemi, N., 2006. In vitro callus induction and plantlet regeneration of Aloe. Iranian Journal of Horticultural science and technology, 7(2): 77-92. - Chow, J.T., Williamson, D.A., Yates, K.M. and Goux, W.J., 2005. Chemical characterization of the immunomodulating polysaccharide of Aloe vera L. Carbonydrate Research, 340: 1131-1142. - Cole, L. and Heard, C., 2007. Skin permeation enhancement potential of Aloe vera and a proposed mechanism of action based up on size exclusion and pull effect. International Journal of Pharmaceutics, 333: 10-16. - HamidOghli, Y., Fatahi Moghadam, J. and Fotouhi Ghazvini, R., 2005. In vitro propagation of medicinal plant Aloe (Aloe barbadensis Mill.). Iranian Journal of Agricultural Science, 36(4): - Karimi, H., 2010. Aloe vera. Agricultural Sciences, Iran, 64p. - Keijzer, C. and Cresti, M., 1987. A comparison of anther tissue development in male sterile Aloe vera and male fertile Aloe ciliaris. Annals of Botany, 59(5): 533-542. - Kumar, M., Singh, S. and Singh, S., 2011. In vitro morphogenesis of a medicinal plant Aloe vera L. Asian Journal of Plant Science and Research, 1(1): 31-40. - Meyer, H.J. and Vanstaden, J., 1991. Rapid in vitro propagation of Aloe barbadensis Mill. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 26(3): 167-171. - Mousavi, F. and Esteki, M., 2010. Aloe vera Plant Thousands Treatment: Planting, Harvesting and Medicinal Properties-Health. Publications Nasouh, Iran, 98p. - Mukherjee, A. and Roychowdhury, B., 2008. The in vitro propagation of Aloe vera sp. TIG Research Journal, 1(2): 116-119. - Natali, L., Sanchez, I.C. and Cavallini, A., 1990. In vitro culture of Aloe barbadensis Mill.: Micropropagation from vegetative meristems. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 20: 71-74. - Nayanakantha, N.M.C., Singh, B.R. and Kumar, A., 2010. Improved culture medium for micropropagation of Aleo vera L. Tropical Agricultural Research & Extension, 13(4): 87-93. - Saggoo, M.I. and Kaur, R., 2010. Studies in North Indian Aloe vera: callus induction and regeneration of plantlets. Scholars Research Library, 2(2): - Supe, U.I., 2007. In vitro regenaration of Aloe barbadensis. Biotechnology, 6(4): 601-603. - Williams, M.S., Burk, M., Loprinzi, C.L., Hill, M., Schomberg, P.J., Nearhood, K., O'Fallon, J.R., Laurie, J.A., Shanahan, T.G., Moore, R.L., Urias, R.E., Kuske, R.R., Engel, R.E. and Eggleston, W.D., 1996. Phase III double-blindevaluation of an Aloe vera gel as a prophylactic agent for radiation-inducedskintoxicity. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics, 36(2): - Yazdani, D., Rezaei, M.B., Kianbakht, S. and Khosravani, S., 2006. A. review of various aspects of medicinal Aloe Vera L. Journal of Medicinal Plants, 5(19): 1-8. - Yin, C. and Xu, C., 1998. Effect of aloe-emodin on proliferation of vascular smooth muscle cells after arterial injury. Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi, 18(7): 420-422. - Yongchaiyudha, S., Rungpitarangsi, V., Bunyapraphatsara, N. and Chokechaijaroenporn, O., 1996. Antidibetic activity of Aloe vera L. juice. I. Clinical trial in new cases of diabetes mellitus. Phytomedicine, 3(3): 241-243. - Ziaee, S., Mesgarpur, B. and Shabestary, A., 2005. Caution and Herb-Drug Interactions Based on Evidence. Timorzadeh Publisher, Iran, 466p. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,004 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 555 |
||