- همه نشریات
- نشریات علمی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویچ کشاورزی
- مجلات ترویجی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- سایر نشریات سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- نشریات علمی انجمن ها
- علوم آب و خاک
- علوم اقتصاد و ترویج کشاورزی
- علوم جنگل, مرتع و آبخیزداری
- علوم دامی و شیلات
- علوم زراعی و باغی
- علوم گیاهپزشکی
- علوم مهندسی و مکانیزاسیون کشاورزی
- نشریات با زبان انگلیسی
- نشریات با زبان فارسی
- نشریات دانشگاه آزاد اسلامی
- نشریات علمی
پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 283 |
| تعداد نشریات سازمان | 81 |
| تعداد شماره‌ها | 2,722 |
| تعداد مقالات | 31,007 |
| تعداد مشاهده مقاله | 27,043,677 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 16,154,157 |
بررسی اثرات طول دوره نوری بر فعالیت برخی آنزیمهای گوارشی معده ای و روده ای در لارو و نوجوان قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) | ||
| مجله علمی شیلات ایران | ||
| مقاله 10، دوره 23، شماره 2، تیر 1393، صفحه 103-115 اصل مقاله (924.77 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/isfj.2014.103701 | ||
| نویسندگان | ||
| سکینه یگانه* ؛ فرشته رمضان زاده؛ خسرو جانی خلیلی؛ سیده صدیقه بابایی | ||
| چکیده | ||
| هدف از این تحقیق بررسی دوره تکاملی آنزیمهای گوارشی و تاثیر دوره نوری بر فعالیت برخی آنزیمهای گوارشی معدهای (پپسین) و رودهای(فسفاتاز قلیایی و -Nآمینوپپتیداز) در لارو و نوجوان قزلآلای رنگینکمان بود . تعداد 3600 لارو قزلآلا در آغاز تغذیه فعال (18 روز پس از تفریخ) با میانگین وزن اولیه 009/0± 119 میلیگرم در 4 تیمار دوره نوری و هر تیمار با سه تکرار (300 قطعه لارو در هر تکرار) قرار گرفتند و آزمایش طی 6 هفته انجام شد. 4 تیمار دوره نوری شامل 14 ساعت روشنایی و 10 ساعت تاریکی، 10 ساعت روشنایی و 14 ساعت تاریکی، 4 ساعت روشنایی و 20 ساعت تاریکی و 24 ساعت روشنایی طراحی گردید. نمونهبرداری از لاروها بصورت کاملاً تصادفی در روزهای0، 1، 3، 5، 8، 10، 15، 20، 25، 30، 39 و 44 روز بعد از آغاز تغذیه فعال انجام شد. طبق نتایج بدستآمده، فعالیت آنزیمهای گوارشی در لارو و نوجوان ماهی قزلآلا، تغییرات مشابهی با سن در همه تیمارهای نوری داشت. در انتهای آزمایش، فعالیت اختصاصی آنزیم پپسین و آمینوپپتیداز در تیمار نوری 24 ساعت روشنایی نسبت به تیمارهای 14 ساعت روشنایی، 10 ساعت روشنایی و 4 ساعت روشنایی بیشتر بود، اما اختلاف معنیداری در فعالیت اختصاصی آنزیم فسفاتاز قلیایی بین دورههای نوری مختلف مشاهده نشد((p>0.05. همچنین فعالیت آنزیمهای گوارشی لارو و نوجوان قزلآلا، در دوره نوری طولانیتر، بهبود مییابد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| آنزیمهای گوارشی؛ دوره نوری؛ Nآمینوپپتیداز؛ آنزیمهای گوارشی؛ پپسین؛ قزل آلای رنگین کمان؛ -Nآمینوپپتیداز؛ فسفاتاز قلیایی؛ قزلآلای رنگینکمان | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| The effect of photoperiod on stomach and intestinal digestive enzymes in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae and juvenile | ||
| نویسندگان [English] | ||
| S. Yeganeh؛ F. Ramzanzadeh؛ KH. Jani Khalili؛ S. Babaei | ||
| چکیده [English] | ||
| This study investigated the ontogeny of some digestive enzyme and explored the effects of photoperiod on stomach (pepsin) and intestine enzyme activity (alkaline phosphatase and N-amino peptidase) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)larvae juvenile. About 3600 larval rainbow trout in first feeding (18 days after hatching) with an average initial weight 119±0.009 mg were distributed in plastic tanks in four treatments (300 larvae in each replicate). Four light treatments consisting of 14 to 10 h, 10 to 14 h, 4 to 20 h and 24 to 0 h (light: dark), were compared in triplicates for 6 weeks.. Finally, a random sampling from larvae was undertaken on days 1, 3, 5, 8, 10, 15, 20, 25, 30, 39 and 44 days after the onset of first feeding. According to the results, the digestive enzymes activity in fish larvae and juveniles had a similar change trend with age at all photoperiods. In addition, at the end of experiment, the specific activity of pepsin and N-amino peptidase were the highest in 24h Light treatment, but there was no significant difference in specific activities of alkaline phosphatase (p>0.05). The results demonstrated that growth and digestive enzymes activity of rainbow trout larvae and juvenile are improved by applying of longer photoperiod in rearing conditions. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| photoperiod, Digestive enzyme, Pepsin, N-amino peptidase, Alkaline phosphatase, Rainbow trout | ||
| مراجع | ||
|
حسینی نجد گرامی، ا. و ایرانی، ع.، 1385. تاثیر رژیم نوری بر رشد، بقا و پارامترهای تغذیهای لارو نورس قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). پژوهش و سازندگی در امور آبزیان شماره 72. صفحه 2-5. قربانی، ع. و محمدی تبار، ب.، 1388. بررسی تاثیردورههای گوناگون نوری بر روی رشد ماهیان قزلآلای رنگینکمان. مطالعه موردی پژوهشکده آبزیپروری آبهای داخلی، بندر انزلی، 12 صفحه. Anson M.L., 1938. The estimation of pepsin, trypsin, papain and cathepsin with Hemoglobin. Journal of General Physiology, 22: 79-89. Babaei S.S., Abedian Kenari A.M., Nazari R.M., and Gisbert E., 2011. Developmental changes of digestive enzymes in Persian sturgeon (Acipenser persicus) during larval ontogeny. Aquaculture, 318: 138-144. Bradford, M.M., 1976. A rapid sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248–254. Cahu C.L., and Zambonino-InfanteJ.L., 1995. Maturation of the pancreatic and intestinal digestive function in sea bass, Dicentrarchus labrax: Effect of weaning with different protein sources. Fish Physiology and Biochemistry, 14: 431–437. Cardenas S., Fernandez-Diaz C., and Yuffera M., 2003. Assessment of digestive enzyme activities during larval development of white bream. Journal of Fish Biology, 63: 48-58. Diaz M., Moyano F.J., Garcia-Carreno F.L., Alarcon F.J., and Sarasquete M.C., 1997. Substrate-SDS-PAGE determination of protease activity through larval development in sea bream. Aquaculture International, 5: 461–471. Faramarzi M., Kiaalvandi S., and Iranshahi F., 2011. The influence of photoperiod regims on growth performance and survival rate of rainbow trout, Onchorhynchus mykiss. World Journal of Fish and Marine Sciences, 3(4): 314_317.
Gisbert E., Gimenez G., Fernandez I., Kotzamanis Y., and Estevez A., 2009. Developmental of digestive enzymes in common dentex, Dentex dentex during early ontogeny. Aquaculture, 287: 381-387.
Golchinfar F., Zamani A., Hajimoradloo A., and Madani R., 2011. Assessment of digestive enzymes activity during the fry development of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss: from hatching to primary stages after yolk sac absorption. Iranian Journal of Fisheries Science, 10(3): 403-414.
Henning S.J., Rubin D.C., and Shulman R.J., 1994. Ontogeny of the intestinal mucosa. In: Johnson, L.R. (Ed), Physiology of the gastrointestinal tract, 3rd edition Raven Press, New York, Pp. 571-610.
Hidalgo M.C., Urea E., and Sanz A., 1999. Comparative study of digestive enzymes in fish with different nutritional habits. Proteolytic and amylase activities. Aquaculture, 170: 267–283.
HoferR., andKock G., 1989. Method for quantitative determination of digestive enzymes in fish larvae. Polish Arch Kurokawa T., and Suzuki T., 1998. Development of intestinal brush border aminopetidase in the larval Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 162: 113–124.
Kuz'mina V.V., 1996. Influence of age on digestive enzymes activity in some freshwater teleost. Aquaculture, 148: 25-37.
Kuz'mina V.V., and Skvortsova E.G., 2003. Contribution of dietary proteolytic enzymes to digestion processes of carnivorous fish. Journal of Ichthyology, 43(2): 175-180.
Ilina I.D., and Turetskiy V.I., 1988. Development of the digestive function in fishes. Journal of Ichthyology, 28: 74-82.
Ma H., Cahu C., Zambonino-Infante J.L., Ya H., Duana Q., Le Gall M.M., and Ma K., 2005. Activities of selected digestive enzymes during larval development of large yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture, 245: 239–248.
Mojazi Amiri B., Bahrekazemi M., Pousti I., and Vilaki A.S., 2005. A histological study on the development of the digestive tract of Salmo trutta caspius (Kessleri) from hatching to parr stage. Iranian Journal of Fisheries Science, 5: 63–84.
Prescott, J.M., and Wilkes, S.H., 1976. Methods in enzymology. Vol. XLV, Part 23 B, Pp. 530-543.
Ribeiro L., Zambonino-Infante J.L., Cahu C., and Dinis M.T., 1999. Development of digestive enzymes in larvae of Solea senegalensis, Kaup.1858. Aquaculture, 179: 465–473.
Sarieyyüpoğlu M., Girgin A., and Köprücü S., 2000. Histological Study in the Digestive Tract on Larval Development Trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum, 1792). Turkish Journal of Zoology, 24: 199-205.
Segner H., Storch V., Reinecke M., Kloas W., and Hanke W., 1994. The development of functional digestive and metabolic organs in turbot, Scophthalmus maximus. Marine Biology, 119: 471–486.
Shan X., Xiao Z., Huang W., and Dou S., 2008. Effects of photoperiod on growth, mortality and digestive enzymes in miiuy croaker larvae and juvenile. Aquaculture,281: 70-76
.Simensen L.M., Jonassen T.M., Imsland A.L., and Stefansson S.O., 2000. Photoperiod regulation of growth of juvenile Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus). Aquaculture, 190: 119-128.
Spungin A., and Blumberg S., 1989. Streptomyces griseous amino peptidase is a calcium-activated zinc metallo-protein Purification and properties of the enzyme. European Journal Biochemistry, 183: 471-777.
Sumpter J.P., 1992. Control of growth of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture,92: 299-320.
Suzer C., Saka S., and Fırat K., 2006. Effects of illumination on early life development and digestive enzyme activities in Common pandora, Pagellus erythrinus L. larvae. Aquaculture, 260: 86–93.
Taylor J., North B., Porter M., Bromage N., and Migaud H., 2006. Photoperiod can be used to enhance growth and improve feeding efficiency in farmed rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, 256: 216-234.
Ueberschär B., 1993. Measurement of proteolytic enzyme activity: significance and application in larval fish research. In: Walter BT, Fyhn HJ (Eds.), Physiological and biochemical aspects of fish development. University of Bergen, Norway, Pp. 233–239.
Ugolev A.M, and Kuz'mina V.V., 1994. Fish enterocyte hydrolases. Nutrition adaptations. Comparative Biochemistry and Physiology, 107A: 187-93.
Wahnon R., Coogan V., and Mokady S., 1992. Dietary fish oil modulates the alkaline phosphatase activity and not the fluidity of rat intestinal microvillus membrane. Journal of Nutrition, 122(5): 1077-1084.
Xiaowu L.I., Zhongjie L.I., Jiashou L.I.U., Tangln Z., and Chaowen Z., 2001. Effects of light intensity on molting, growth, precocity, digestive enzyme activity and chemical composition of juvenile Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis. Aquaculture, 19: 301-311.
Yúfera M., and Darias M.J., 2007. The onset of exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture, 268: 53–63.
Zamani A., Hajimoradloo A., Madani R., and Farhangi M., 2009. Assessment of digestive enzymes activity during the fry development of the endangered Caspian brown trout, Salmo caspius. Journal of Fish Biology, 75(4): 932-937.
Zambonino-Infante J.L., and Cahu C.L, 2001. Ontogeny of the gastrointestinal tract of marine fish larvae. Comparative Biochemistry and Physiology, 130C: 477–487. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 815 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 2,667 |
||
سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب