| تعداد نشریات | 284 |
| تعداد نشریات سازمان | 82 |
| تعداد شماره‌ها | 2,784 |
| تعداد مقالات | 31,679 |
| تعداد مشاهده مقاله | 40,110,067 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 17,604,333 |
اثر استفاده از بنتونیت سدیم و دیواره سلولی مخمر بر میزان تولید پادتن در پاسخ به واکسیناسیون علیه بیماری بورس عفونی درجوجه‌های گوشتی مبتلا به آفلاتوکسیکوزیس تجربی | ||
| تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک | ||
| شناسنامه علمی شماره، دوره 25، شماره 3، مهر 1391، صفحه 7-13 اصل مقاله (530.8 K) | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/vj.2012.101051 | ||
| نویسندگان | ||
| حسن قهری* 1؛ مهدی عبداله فام2؛ سید جواد کوه کمری3 | ||
| 1استادیار دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد ارومیه، ارومیه | ||
| 2دانش آموخته دکترای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ارومیه، ارومیه | ||
| 3دکترای دامپزشکی و کارشناس مرکز تحقیقات مرغ بومی جهاد کشاورزی استان آذربایجان غربی | ||
| چکیده | ||
| آفلاتوکسین اثرات مضر بر عملکرد و ایمنی در برابر بیماری ها دارد که بر این اساس مواد مختلف جاذب سموم قارچی جهت کاهش اثرات سوء آفلاتوکسین استفاده می گردد. در این مطالعه توانایی دیواره‌ی سلولی مخمر و بنتونیت سدیم به عنوان مواد جاذب سموم قارچی در کاهش مسمومیت با آفلاتوکسین در جوجه‌های گوشتی تغذیه شده از جیره‌ی حاوی ذرت کپک‌زده و حاوی آفلاتوکسین بررسی گردید. 240 قطعه جوجه گوشتی از سویه راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی با 10 گروه آزمایشی و 3 تکرار و جمعاً در 30 واحد آزمایشی از نظر تولید پادتن بر علیه بیماری بورس عفونی بررسی شد. تیمار های آزمایشی شامل: جیره شاهد فاقد آفلاتوکسین، جیره شاهد حاوی آفلاتوکسین، جیره های حاوی آفلاتوکسین و دو سطح مختلف دیواره سلولی مخمر (5/0 و 1 درصد) و دو سطح بنتونیت سدیم(5/0 و 1 درصد) و جیره حاوی آفلاتوکسین با سطوح ترکیبی این دو ماده بود. آزمایش از سن 8 روزگی شروع و در سنین 21، 28، 35 و 42 روزگی با اخذ نمونه خونی، میزان پادتن به روش الایزا اندازه گیری گردید. دیواره سلولی مخمر در بهبود میزان تیتر پادتن، بهتر از بنتونیت سدیم عمل کرده بود. ترکیب این مواد (1/0 درصد دیواره سلولی مخمر و 5/0 درصد بنتونیت سدیم) در جیره های حاوی آفلاتوکسین سبب کاهش معنی داری در تاثیر آفلاتوکسین بر تولید پادتن برعلیه بیماری بورس عفونی شده است، بطوریکه جوجه های تغذیه شده با جیره حاوی 5/0 در صد بنتونیت سدیم و 05/0 درصد دیواره سلولی مخمر، یا جیره حاوی 5/0 در صد بنتونیت سدیم و 1/0 در صد دیواره سلولی مخمر در مقایسه با تیمارهای دیگر تیتر پادتن بالایی داشتند. | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Efficacy of sodium bentonite and esterified glucomannan on antibody titer in response to infection bursal disease vaccine during experimental Aflatoxicosis in broiler | ||
| نویسندگان [English] | ||
| H Ghahri1؛ M Abdollahfam2؛ S.J Koohkamari3 | ||
| 1Assistant Professor of Islamic Azad University Urmieh Branch | ||
| 2Graduated of Veterinary Medicine, Islamic Azad University Urmieh Branch | ||
| 3Expert of Poultry Research Center of West Azarbayjan | ||
| چکیده [English] | ||
| Studies have shown that aflatoxin is immunosuppressive and its ingestion in feed has resulted in decreased immunity in vaccinated birds .Therefore, the purpose of the present study was to determine the efficacy of sodium bentonite (SB) and esterified glucomannan (E-GM) of yeast cell wall, in counteracting the toxic effects of aflatoxin (AF) on immunization against Infectious Bursal Disease (IBD) in broiler feed with naturally contaminated diet with aflatoxin. Seven-day-old chicks were randomly assigned to 10 dietary treatments in three replicates of 8 chicks. Treatments were:1) control; 2) naturally contaminated diet; 3, and 4) naturally contaminated diet (NCD) supplemented with 0.5 and 1.0% SB respectively; 5 and 6) (NCD) with 0.05 and 0.1% E-GM respectively; 7) NCD supplemented with 0.5% SB and 0.05 % E-GM, 8) NCD supplemented with 0.5% SB and 1.0 % E-GM, 9) NCD supplemented with 1.0% SB and 0.05 E-GM, and 10) NCD supplemented with 1.0% SB and 0.1% E-GM. blood samples were taken in 21, 28, 35 and 42 day of age and the titers of antibody against IBD were measured by ELISA test. The addition of E-GM and SB to the aflatoxincontaining diet ameliorated the adverse effects of aflatoxin on IBD antibody titers, but E-GM supplementation to the contaminated diet with aflatoxin proved to be much more effective in the amelioration of the adverse effect of aflatoxin on homoral immunity against IBD. These results clearly demonstrated that simultaneous addition of E-GM and SB (Treatment 8) to the AF-containing diet provided significant reduction on the immunotoxic effects of AF. | ||
| مراجع | ||
|
1- Araba, M. and R.D. Wyatt, (1991) Effects of sodium bentonite, hydrated sodium calcium aluminosilicate (Novasil), and Ethacal on aflatoxicosis in broiler chickens. Poultry Sci, 70:6. 2- Aravind, K. L., Patil, V.S., Devegowda, G., Umakantha, B. and Ganpule, S. P. (2003) Efficacy of esterified glucomannan to counteract mycotoxicosis in naturally contaminated feed on performance and serum biochemical and hematological parameters in broilers. Journal of Poultry Science, 82:571–576. 3- Association of Official Analytical Chemists (AOAC). (1995) Official Methods of Analysis. 6th ed. Association of Official Analytical Chemists. Washington, DC. 4- Azzam, A.H. and M.A. Gabal, (1997) Interaction of aflatoxin in the feed and immunization against selected infectious diseases. I. Infectious bursal disease. Avian Pathol, 26: 317-325. 5- Bailey, R.H., Kubena, L.F., Harvey, R.B., Buckley, S.A. and Rottinghaus, G.E. (1998) Efficacy of Various Inorganic Sorbents to Reduce the Toxicity of Aflatoxin and T-2 Toxin in broiler. Poultry Science, 77:1623–1630. 6- Boulton, S. L, J. W. Dick and B. L. Hughes, (1981) Effects of dietary aflatoxin and ammonia-inactivated aflatoxin on Newcastle disease antibody titers in layer-breeders. Avian Dis, 26: 1-6. 7- Bridane, Y. O., Cole, R., Basmacioglu, H. and Oguz, H. (2004) Effect of estrefied glucomannan on aflatoxicosis: 2) Serum biochemical-hematological and bone parameters. Worlds Poultry Congress. Turkey, Estanbul. 2004. 8- Campbell, M.L., J.A. Doerr, J.D. May, and W.E. Huff, (1981) Immunity in young broiler chickens during simultaneous aflatoxicosis and ochratoxicosis. Poultry Sci, 60: 1633. 9- Davis, N.D. and Deiner, U.L. (1983) Some characteristics of toxigenic and nontoxigenic isolate of Aspergillus flavus and Aspergillus parasiticus. Southern Coop Series Bull.Craftmaster, Opelika, Ala, 279–285. 10- Devegowda, G., Aravind, B.I.R, Rajendra, K., Morton, M.G., Baburathna, K. & Sudarshan, C. (1994) A biological approach to counteract aflatoxicosis in broiler chickens and ducklings by the use of Saccharomyces cerevisiae cultures added to feed. Biotechnology in the feed industry. In T.P. Lydons & K.A. Jacques (Eds) Proceedings of Alltech’s 10th Annual symposium Loughborough: Nottingham University Press, 235–245. 11- Devegowda, G., B.I.R., Aravind, and M.G., Morton, (1996)Saccharomyces cerevisiae and mannanoligosaccharides to counteract aflatoxicosis in broilers. Proceedings of the Australian Poultry Science Symposium, Sydney, Australia. 8:103-106. 12- Eshdat, Y., I. Ofek, Y. Yehuidit-Gan, Y. Yashouv-Gan, N. Sharon and D. Mirelmann, (1978) Isolation of a mannose-specific lectin from E. coli and its role in the adherence of the bacteria to epithelial cells. Biochem Biophys Res Com, 85: 1551-1559. 13- Huwig, A., Freimund,S., Kappeli, O. and Dutler, H. (2001) Mycotoxin detoxification of animal feed by different adsorbents. Toxicology Letterse, 122: 179-188. 14- Ibrahim I. K., A. M., Shareef and K. M. T. Al-Joubory, (2000)Ameliorative effects of sodium bentonite on phagocytosis and Newcastle disease antibody formation in broiler chickens during aflatoxicosis. Res Vet Sci, 69: 119-122. 15- Kececi, T., H. Oguz, V. Kurtoglu and O. Demet, (1998) Effects of polyvynylpoly-pyrrolidone, synthetic zeolite and bentonite on serum biochemical and haematological characters of broiler chickens during aflatoxicosis. Brit Poultry Sci, 39:452–458. 16- National Research Council. Nutrient Requirements of Poultry. 9th rev ed. National Academy Press. Washington, DC. 1994. 17- Raju, M. V. and Devegowda, G. (2000) Influence of Esterified-Glucomannan on performance and organ morphology, serum biochemistry and haematology in broiler exposed to individual and combined mycotoxicosis (aflatoxin, ochratoxin and T-2 toxin). British Poultry Science, 41:640–650. 18- Romer, T.R. (1975) Screening method for the detection of aflatoxins in mixed feed and other agricultural commodities with subsequent confirmation and quantitative measurement of aflatoxins in positive samples. Journal Association of Official Analytical Chemists, 58:500–506. 19- SAS Institute, SAS User’s Guide: Statistics. Version 6 Edition. SAS Institute Inc., Cary, NC. 1985 20- Savage, T.F., P.F. Cotter and E.I. Zakrzewska, (1996) The effect of feeding mannanoligosaccharide on immunoglobulins, plasma IgG and bile IgA of Worldstat MW male turkeys. Poultry Sci, 75 (1): 143. 21- Stanley, V. G., R. Ojo, S. Woldensenbet, D. H. Hutchinson and L. F. Kubena. (1993) The use of Saccharomyces cerevisiae to suppress the effects of aflatoxicosis in broiler chicks. Poultry Sci, 72:1867-1872. 22- Stewart, R.G., J.K. Skeeles, R.D. Wyatt, J. Brown, R.K. Page, I.D. Russel and P.D. Lukert, (1985) The effect of aflatoxin on complement activity in broiler chickens. Poultry Sci. 64:616-619. 23- Surai, P.F. and M. Mezes, (2005) Mycotoxins and Immunity: Theoretical Consideraton and Practical Applications. Praxis Veterinaria 53:71-88. 24- Thaxton, J.P., H.T. Tung and P.B. Hamilton, (1974) Immunosuppression in chickens by aflatoxin. Poultry Sci, 35:721-725. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,439 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 569 |
||